Эпидемиология и Инфекционные болезни. Актуальные вопросы №4 / 2021

Метод измерения размера клеточного резервуара ВИЧ и определение его у пациентов без опыта приема АРТ

13 декабря 2021

1) Центральный НИИ эпидемиологии Роспотребнадзора, Москва, Россия;
2) Клинический центр профилактики и борьбы со СПИД Министерства здравоохранения Краснодарского края, Краснодар, Россия

Цель исследования. Разработка метода определения размера резервуара, измерение его у ВИЧ-инфицированных лиц без опыта приема АРТ и анализ его связи с вирусной нагрузкой (ВН), длительностью инфекции и иммунным статусом.
Материалы и методы. Обследованы 268 ВИЧ-инфицированных пациентов без опыта АРТ с известными сроками заражения. На момент взятия крови у пациентов определяли ВН и показатель иммунного статуса. ДНК выделяли из мононуклеарных клеток периферической крови (МКПК) и количественно оценивали методом ПЦР в реальном времени. Размер резервуара рассчитывали как число копий провирусной ДНК к общему числу клеток. Результаты выражали в log10 копий/106 МКПК.
Результаты. Концентрация ДНК ВИЧ варьировала от 0,04 до 3,84 log10 копий ДНК ВИЧ/106 МКПК (медиана – 2,22, межквартильный диапазон – 1,74–2,72 log10 копий ДНК ВИЧ/106 МКПК). Размер резервуара коррелировал с ВН (r = 0,526; p < 0,01), иммунным статусом (r = -0,189; p < 0,05) и длительностью инфекции (r = -0,282; p < 0,01).
Заключение. Концентрация ДНК ВИЧ в качестве маркера размера вирусного резервуара позволяет получить дополнительную информацию о течении заболевания. Можно рекомендовать использовать этот показатель в совокупности с ВН и иммунным статусом для случаев инфекции на ранних стадиях.

Появление и внедрение антиретровирусной терапии (АРТ) в практику оказания помощи людям, живущим с ВИЧ, позволило перевести заболевание в хроническую форму [1]. Продолжительность жизни таких пациентов с высокой приверженностью терапии не отличается от продолжительности жизни людей, живущих без ВИЧ [2]. Но на сегодняшний день полностью излечиться от ВИЧ-инфекции невозможно, и даже при многолетней эффективной терапии полного уничтожения вируса в организме достичь не удается. Причиной этого является существование резервуара ВИЧ [3] – клеток, инфицированных репликативно-компетентным вирусом в разных тканях и анатомических зонах. Такие клетки присутствуют в организме человека, несмотря на длительный прием антиретровирусных препаратов (АРВП) [4]. После прерывания терапии через определенное время вирус, находящийся в латентном состоянии, возобновляет репликацию из-за исчезновения лекарственного подавления, и ВН возрастает [3]. Таким образом, существование резервуара – основная причина необходимости пожизненного регулярного приема АРВП.

Исследования показали, что размер резервуара влияет на множество параметров, таких как скорость прогрессирования болезни [5], риск развития ВИЧ-ассоциированных заболеваний [6, 7], время достижения недетектируемой ВН при приеме АРВП [8]. С. Rouzioux и соавт. [9] установили, что концентрация ДНК ВИЧ в мононуклеарных клетках периферической крови (МКПК) является основным предиктором прогрессирования заболевания, снижения количества CD4+-лимфоцитов до уровня < 200 клеток/мкл и наступления СПИДа, независимо ни от концентрации РНК ВИЧ, ни от количества CD4+-лимфоцитов.

ДНК ВИЧ в организме человека может существовать в разных формах: интегрированной в хромосому клетки (интактный и дефектный провирус), и неинтегрированной (кольцевые длинные концевые повторы 1-LTR, 2-LTR и линейная ДНК) [10]. Все эти формы суммарно называются тотальной ДНК ВИЧ.

Для каждой формы существуют свои методы оценки. До недавнего времени «золотым стандартом» измерения вирусного резервуара считался QVOA (Quantitative Viral Outgrowth Assay) [11], но в результате дальнейших исследований стало ясно, что этот метод недооценивает фактический размер вирусного резервуара, потому как не все CD4+-лимфоциты пролиферируют после первого раунда активации. К тому же этот метод оказался дорогим, трудоемким, длительным и неприменимым для клинических исследований. На смену ему пришли методы на основе ПЦР, такие как Alu-PCR [12], IPDA [13] и Q4PCR [14], нацеленные на несколько областей провирусной ДНК, тем самым исключая из анализа дефектные провирусы, содержащие гипермутации, вставки, делеции и др. Коллектив BEAT-HIV Martin Delaney Collaboratory выпускает рекомендации, отдавая приоритет IPDA или Q4PCR для измерения размера резервуара ВИЧ в крови и тканях во время клинических испытаний, связанных с лечением ВИЧ [4]. Эти методы позиционируются как дешевые, быстрые и простые по сравнению с QVOA, позволяющие оценить уровень репликативно-компетентного вируса. Из недостатков исследователи выделяют высокую вариабельность от пациента к пациенту, так как в некоторых случаях наблюдалась значительная частота ложного обнаружения, дефектные провирусы признавались за интактные либо не давали сигнала. Объясняется это полиморфизмом последовательностей в провирусных геномах и требованием гибридизации с третьим и/или четвертым зондом, что снижает чувствительность этих методов [4].

Дефектный провирус может быть трансляционно-активным и «мертвым», то есть неспособным продуцировать вирусные белки [15]. Ввиду этого такой маркер, как тотальная ДНК ВИЧ подвергается критике из-за невозможности дифференциации интегрированной и неинтегрированной форм, а также интактного...

>
Квасов Н.А., Полякова А.К., Лопатухин А.Э., Мурзакова А.В., Шемшура А.Б., Киреев Д.Е.
Статья платная, чтобы прочесть ее полностью, вам необходимо произвести покупку
Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.