Урология №5 / 2022

Влияние пиеловенозного рефлюкса на развитие острого пиелонефрита в экспериментальной модели

7 ноября 2022

1) ФГАОУ ВО РНИМУ им. Н. И. Пирогова Минздрава России, Москва, Россия;
2) ГБУЗ Москвы «Городская клиническая больница № 1 им. Н. И. Пирогова» Департамента здравоохранения г. Москвы, Москва, Россия;
3) ФГАОУ ВО «Первый МГМУ им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет), Москва, Россия

Введение. В настоящее время эндоскопические методы являются основным вариантом хирургического лечения больных мочекаменной болезнью (МКБ). Широкое распространение данных операций повлекло за собой развитие ряда специфических осложнений, сопряженных с технологией их выполнения. Одним из частых осложнений является развитие послеоперационного острого пиелонефрита на фоне интраоперационно возникшего пиеловенозного рефлюкса.
Цель исследования: изучить в условиях эксперимента выраженность патоморфологических изменений ткани мочеточника и почки на фоне пиеловенозного рефлюкса при наличии и отсутствии бактериальной флоры.
Материалы и методы. В качестве экспериментальной модели выбраны 32 половозрелых кролика- самок породы белый великан. Экспериментальный штамм микроорганизма E. сoli 105 KOE/мл. Лабораторные животные разделены на 4 группы: 1–3-я группы – экспериментальные, 4-я – контрольная группа наблюдения без оперативного вмешательства.
В экспериментальных группах в просвет мочеточника вводился в 1-й группе NaCl 0,9%, 2,0 мл, во 2-й группе – E. сoli 1х105 КОЕ/мл, 1,0 мл, в 3-й группе – NaCl 0,9% ,1,0 мл+E. сoli 1х105 КОЕ/мл,1,0 мл. Результаты. По данным проведенного исследования, при патоморфологической оценке препаратов почек и мочеточников выявлены выраженные воспалительные изменения в третьей группе.
Выводы. Пиеловенозный рефлюкс самостоятельно не приводит к развитию острого пиелонефрита. Сочетание рефлюкса и микробной флоры приводит к воспалительным изменениям в стенке чашечно-лоханочной системы (ЧЛС) с развитием острого пиелонефрита, что подтверждено результатами патоморфологического исследования ткани почек и мочеточников.

Введение: эндоскопические методы оперативного вмешательства в настоящее время являются методом выбора при лечении больных мочекаменной болезнью (МКБ). Широкое распространение данных операций повлекло за собой развитие ряда специфических осложнений, сопряженных с особенностями оперативного доступа. С целью уменьшения риска интраоперационных кровотечений отмечается тенденция к уменьшению диаметра инструментов. Однако отмечается повышение частоты инфекционных осложнений, связанных с развитием пиеловенозного рефлюкса на фоне нагнетания ирригационной жидкости в полости чашечно-лоханочной системы с недостаточно адекватным оттоком жидкости по кожуху или мочеточниковому катетеру [1, 2]. Физиологическое внутрилоханочное давление составляет 10 см вод.ст., пиеловенозный рефлюкс возникает при повышении давления выше 30–45 см вод.ст. [3]. Частота послеоперационных инфекционных осложнений, таких как острый пиелонефрит, уросепсис, достигает 25% [4, 5]. В 80% случаев возбудителем внебольничного острого пиелонефрита является Escherichia сoli (E. сoli) [6]. В последние годы отмечается прирост заболеваемости инфекцией мочевыводящих путей (ИМП). На фоне лечения антибактериальными препаратами отмечается стремительный рост резистентности микроорганизмов к большинству применяемых из них препаратов среди внутрибольничных и внебольничных штаммов [7].

Около 70–80% наблюдений осложненной ИМП связаны с предыдущими урологическими вмешательствами, такими как катетеризация верхних мочевыводящих путей, ранее выполненное оперативное лечение [8–9].

Цель исследования: изучить в условиях эксперимента выраженность патоморфологических изменений ткани мочеточника и почки на фоне пиеловенозного рефлюкса при наличии и отсутствии бактериальной флоры.

Материалы и методы. Дизайн исследования разработан в соответствии с рекомендациями ARRIVE (Animal Research: Reporting of In Vivo Experiments); описание экспериментальной части основано на чек-листе проверки качества экспериментальных исследований [10, 11]. Разработка и проведение клинической части эксперимента основаны на положениях, статьях и требованиях, отраженных в международных и отечественных документах и руководствах, согласно рекомендациям Ассоциации специалистов по работе с лабораторными животными Rus-Lasa (Russian Laboratory Animal Science Association) [12, 13].

Лабораторные животные (ЛЖ): 32 половозрелых кролика-самок породы белый великан, массой 3,1±0,3 кг и возрастом 4–5 мес. ЛЖ содержались в частном виварии, что отвечало санитарно-эпидемиологическим и гигиеническим нормам в соответствии с ГОСТ 33215-2014 «Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными. Правила оборудования помещений и организации процедур» и ГОСТ 33216-2014 «Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными. Правила содержания и ухода за лабораторными грызунами и кроликами» [14, 15]. ЛЖ находились в отдельных клетках, со свободным доступом к пище и воде, с соблюдением режима дня и ночи 12 ч, температурой помещения 21–23°С, влажностью 75–80%. Срок адаптации кроликов перед началом исследования – 10 дней.

Перед проведением эксперимента все ЛЖ осмотрены ветеринарным врачом (ратологом) с целью выявления и исключения больных особей.

Температура тела за время адаптационного периода составляла в среднем 38,5±0,5°С. Нормальная температура тела кроликов – в пределах 38,5–39,5°С [16]. Во время проведения эксперимента ветеринарный врач присутствовал в качестве консультанта.

Экспериментальный штамм. E. сoli ATCC 25922, суточная культура, стандарт мутности Макфарланда-2 (McFarland) c последующим титрованием до получения концентрации E. сoli 1х105 КОЕ/мл.

Рандомизация. С целью исключения ошибок отбора, которые могли бы ухудшить качество эксперимента, лабораторные животные по истечении адаптационного срока были разделены на 4 группы: 1–3-я группы – экспериментальные (по 10 особей в каждой группе) и 4-я – контрольная (2 особи).

Экспериментальное моделирование. Специфическое устройство желудочно-кишечного тракта, отсутствие рвотного рефлекса у кролика исключают попадание содержимого желудочно-кишечного тракта в верхние дыхательные пути. С учетом данного факта подготовка кишечника перед операцией не проводилась. Перед проведением анестезии выполнялось взвешивание экспериментальных животных для определения точной дозировки анестезирующего препарата. Животных оперировали под на...

О.Р. Ахмедов, Д.М. Магомедов, С.Р. Ахмедов, Ш.М. Саргсян, С.А. Пульбере, С.В. Котов
Статья платная, чтобы прочесть ее полностью, вам необходимо произвести покупку
Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.