Урология №3 / 2018

Частота выявляемости и резистентность основных нозокомиальных уропатогенов в моче урологических больных в Ивановском регионе

13 июля 2018

Кафедра факультетской хирургии и урологии (зав. – д.м.н., проф. А. И. Стрельников) ФГБОУ ВО ИвГМА МЗ России, Иваново, Россия

Цель исследования: уточнить этиологию нозокомиальных ИМП, встречающихся в урологических отделениях и поликлинике ОБУЗ «Ивановская областная клиническая больница» (ИвОКБ), сформулировать рекомендации по эмпирическому назначению антибактериальных препаратов.
Материалы и методы. Выполнен мониторинг бактериального пейзажа мочи у пациентов урологического профиля с 1999 по 2015 г., определена чувствительность возбудителей к основным антибактериальным препаратам с помощью диско-диффузионного метода по Keurby–Bauer.
Результаты. Установлена частота выявляемости возбудителей осложненных урологических инфекций у взрослых и детей, зависимость спектра возбудителей от возраста пациента; выявлены наиболее эффективные антибактериальные препараты для больных нозокомиальными ИМП в Ивановском регионе. Выявлена высокая резистентность штаммов E. сoli к фторхинолонам, налидиксовой кислоте и нитрофуранам, в 3 раза превышающая резистентность к цефалоспоринам.
Заключение. Необходимо резко сократить эмпирическое использование фторхинолонов, препаратов налидиксовой кислоты, нитрофуранов и полностью исключить использование ампициллина в отношении больных нозокомиальными ИМП в Ивановском регионе. С целью снижения частоты нозокомиальных инфекций после выписки пациента из стационара использовать в эмпирической терапии цефалоспорины III поколения.

Введение. Исследования последних лет показывают, что наиболее проблемными являются нозокомиальные инфекции мочевыводящих путей (ИМП) [1–4]. С каждым годом увеличивается резистентность штаммов микроорганизмов у мужчин и женщин всех возрастов, что отражено в работах последних лет, выполненных в разных регионах мира [1–4]. На сегодняшний день практически не осталось ни одного антибиотика, к которому были бы чувствительны все внутрибольничные инфекции. Данная проблема обусловливает необходимость индивидуального подхода к подбору антибиотикотерапии не только для каждого региона, но и для каждого пациента в отдельности. Проблема эффективной профилактики и лечения ИМП как в амбулаторной, так и в стационарной практике до сих пор остается актуальной в связи со сложным патогенезом заболевания, неуклонным ростом числа резистентных штаммов микроорганизмов, имеющейся тенденцией к развитию тяжелых гнойно-септических осложнений и сепсиса у урологических больных [1–6]. Большинство эмпирически используемых в настоящее время антибиотиков нельзя назвать эффективными в лечении ИМП, так как часто в популяции персистируют резистентные штаммы микроорганизмов. Это объясняет не только медицинскую, но и социально-экономическую значимость проблемы, что требует использования современных высокоэффективных и дорогостоящих препаратов [5–8]. Исследования последних лет, проведенные в России, выявили высокую устойчивость E. сoli к ранним пенициллинам и ко-тримаксозолу, низкую резистентность к фторхинолонам, нитрофуранам и цефалоспоринам [4, 8, 9]. Резистентность микроорганизмов, вызывающих ИМП, требует постоянного мониторинга, поскольку различается в разных регионах мира [1–6, 9–13]. У пациентов с осложненными ИМП частота выделения резистентных штаммов выше, чем у пациентов с неосложненными ИМП, также имеются и географические различия [1–3, 7, 10–13].

Целью данного исследования было уточнить этиологию нозокомиальных ИМП, встречающихся в урологических отделениях и поликлинике ОБУЗ «Ивановская областная клиническая больница» (ИвОКБ), сформулировать рекомендации по эмпирическому назначению антибактериальных препаратов.

Материалы и методы. Проведено бактериологическое исследование мочи пациентов, получавших лечение в связи с ИМП в детском, взрослом урологических отделениях и в поликлинике ИвОКБ. Материалом исследования служила средняя порция утренней свободно выпущенной мочи, полученная после туалета наружных половых органов, либо моча, собранная катетером. Мочу собирали в стерильные одноразовые контейнеры и доставляли в бактериологическую лабораторию в течение не более 2 ч с момента забора.

Процедуру посева на питательные среды, выделение и идентификацию чистых культур, определение чувствительности микроорганизмов к антибиотикам в лаборатории ИвОКБ проводили в соответствии с регламентирующими нормативными документами по стандартным методикам [14–18]. Чувствительность бактерий к антибиотикам определяли с помощью диско-диффузионного метода по Keurby–Bauer. Метод разработан (Версия 4.0, июнь 2014 г.) на основании The European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST) по оценке антимикробной чувствительности [8, 16, 18]. Для определения чувствительности микроорганизмов использовали агар Мюллера–Хинтона и среду АГВ. Агаровая среда Мюллера–Хинтона представляет собой стандартную питательную среду, соответствующую общепринятым стандартам, предлагаемым Европейским комитетом по определению чувствительности к антимикробным препаратам EUCAST [8, 16, 18]. Агар Мюллера–Хинтона выпускается микробиологическими фирмами-производителями (ЗАО НИЦФ, Россия) в сухом виде для приготовления среды в лабораторных условиях. Питательная среда АГВ ...

Д.Г. Почерников, А.И. Стрельников, Д.С. Базунов, К.А. Ефимычев, У.С. Сердюцкая
Статья платная, чтобы прочесть ее полностью, вам необходимо произвести покупку
Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.