«Акушерство и Гинекология» ISSN 2412-5679

Хромосомные аномалии при неиммунной водянке плода: диагностика и тактика ведения беременности

Д.Г. Люшнина, Н.К. Тетруашвили, Е. Шубина, М.С. Рогачева, Н.В. Зарецкая, А.С. Большакова, И.Ю. Барков, И.О. Саделов, В.С. Пак, Е.Л. Бокерия, Д.Ю. Трофимов

Цель: Изучить роль хромосомных аномалий и оптимальных методов их генетического тестирования при установленном диагнозе неиммунная водянка плода (НИВП).

Материалы и методы: После прохождения перинатального консилиума и генетического консультирования были отобраны 43 беременных с НИВП, которым была проведена инвазивная пренатальная диагностика в сроке от 15 до 30 недель. На первом этапе тестирования плодового материала использовался метод количественной флуоресцентной полимеразной цепной реакции (QFCR) для выявления аномалий хромосом 13,18,21, Х, Y. На втором этапе проводилось молекулярное кариотипирование с использованием ДНК-микроматриц.

Результаты: По срокам манифестации НИВП пациентки были разделены на 3 группы: Группа 1 – с манифестацией до 13 недель 6 дней, Группа 2 – с 14 до 21 недель 6 дней, Группа 3 – с 22 недель. В группе 1 было установлено, что хромосомные аномалии представляют собой наиболее распространенную причину НИВП (78,5%) и связаны с более высоким риском перинатальных потерь. Лишь в 2 из 14 случаев при ранней манифестации НИВП удалось достичь живорождения у пациенток с нормальным кариотипом плода. Хромосомные аномалии были представлены синдромом ШерешевскогоТернера (13,9%), синдромом Дауна (6,9%), синдромом Эдвардса (2,3%) и синдромом Ди Джорджи (2,3%) – всего у 11/43 (25,6%) пациенток. У пациенток с манифестацией НИВП после 14 недель не было диагностировано хромосомных аномалий, что было сопряжено с более высоким уровнем живорождения.

Заключение: Проведенное исследование продемонстрировало необходимость проведения инвазивной пренатальной диагностики, место и преимущества каждого из методов генетического тестирования, проводимого пренатально при НИВП. Данные генетического тестирования актуальны при консультировании семейных пар по поводу прогноза текущей беременности и для оценки риска повтора НИВП при последующих беременностях в данной семье.

Ключевые слова: беременность, неиммунная водянка плода, хромосомные нарушения, хромосомные аномалии, асцит, генерализованный отек, кистозная гигрома шеи, QF-PCR, молекулярное кариотипирование.

Вклад авторов: Люшнина Д.Г., Тетруашвили Н.К., Шубина Е., Зарецкая Н.В., Бокерия Е.Л., Трофимов Д.Ю. – концепция и дизайн исследования; Люшнина Д.Г., Пак В.С., Большакова А.С., Саделов И.О. – сбор и обработка материала; Люшнина Д.Г., Рогачева М.С., Шубина Е. – статистическая обработка данных; Люшнина Д.Г., Тетруашвили Н.К., Шубина Е. – написание текста; Тетруашвили Н.К., Большакова А.С., Шубина Е., Бокерия Е.Л., Трофимов Д.Ю. – редактирование.

Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Финансирование: Исследование выполнено в рамках Государственного задания по теме: «Разработка тест-системы для пренатальной диагностики кардиопатологии плода», 2-А21.

Одобрение Этического комитета: Исследование было одобрено локальным Этическим комитетом ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России.

Согласие пациентов на публикацию: Все пациенты подписали добровольное информированное согласие на публикацию своих данных.

Обмен исследовательскими данными: Данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны по запросу у автора, ответственного за переписку, после одобрения ведущим исследователем.

Для цитирования: Люшнина Д.Г., Тетруашвили Н.К., Шубина Е., Рогачева М.С., Зарецкая Н.В., Большакова А.С., Барков И.Ю., Саделов И.О., Пак В.С., Бокерия Е.Л., Трофимов Д.Ю. Хромосомные аномалии при неиммунной водянке плода: диагностика и тактика ведения беременности.

Акушерство и гинекология. 2024; 7:

В связи с усовершенствованием методов молекулярно-генетической диагностики и развитием фетальной медицины определение причин неиммунной водянки плода (НИВП) приобретает особую актуальность. Согласно данным современных литературных источников, НИВП характеризуется не только, как патологическое скопление жидкости в двух и более серозных полостях плода, но и поражение одной серозной полости в совокупности с генерализованным отеком кожи (более 5 мм) или кистозной гигромой шеи плода [1–5]. Многоводие и утолщение плаценты часто являются сопутствующими ультразвуковыми находками, связанными с НИВП. Причины НИВП разнообразны; однако данные многих исследований свидетельствуют о том, что одной из наиболее частых причин являются хромосомные нарушения у плода, частота которых колеблется в широких пределах – от 8 до 80% случаев [6–9].

Общая частота НИВП,  по разным данным  варьирует от 1 на 1700 до 1 на 1300 беременностей во всем мире [10–12]. В целом, большинство авторов сходятся во мнении, что НИВП значительно ухудшает прогноз течения беременности, повышая частоту таких осложнений, как антенатальная гибель плода, преждевременные роды, мертворождение, неонатальная заболеваемость и смертность. Прогноз в каждом конкретном случае зависит от гестационного срока манифестации НИВП, своевременности постановки диагноза, наличия хромосомной патологии у плода, проведенной терапии, метода родоразрешения и своевременного оказания терапевтической или хирургической помощи новорожденному [5, 13–16].

При  проведении  комбинированного пренатального скрининга в первом триместре  наиболее частыми аномалиями являются кистозные гигромы или генерализованный отек у плода [6, 17]. В основном, данные пациентки направляются на прерывание беременности в связи с неблагоприятным прогнозом для плода, а исследование аутопсийного плодового материала впоследствии не проводится. Однако не во всех случаях причиной данных аномалий  является спонтанное нарушение числа хромосом, имеющее низкую вероятность повторения, и не у всех плодов в дальнейшем на антенатальном этапе проявляется НИВП. Таким образом, пренатальная диагностика НИВП имеет важное значение для выбора тактики ведения беременности, оценки прогноза развития, как данного плода, так и риска рецидива НИВП при последующих беременностях у супружеской пары. В нашей стране инвазивная пренатальная диагностика (ИПД) при НИВП чаще проводится с применением цитогенетического исследования. Количественная флуоресцентная полимеразная цепная реакция (QF-PCR) и метод молекулярного кариотипирования с использованием ДНК-микроматриц (ХМА) в настоящее время не внедрены в алгоритм обследования на пренатальном этапе. Метод QF-PCR основан на мультиплексной ПЦР с использованием флуоресцентно меченных праймеров, ограничивающих полиморфные короткие тандемные повторы. Его преимуществом является быстрое (в течение 2–3 рабочих дней) выявление часто встречающихся хромосомных анеуплоидий и невысокая стоимость исследования. Молекулярное кариотипирование – это метод молекулярно-генетического исследования кариотипа, в основе которого лежит гибридизация ДНК с микроматрицами.  ХМА позволяет получить информацию о микроскопических и субмикроскопических вариациях числа копий (CNV) в геноме [18]. Преимуществами ХМА, помимо разрешающей способности, являются требования к материалу (не нужны делящиеся клетки, что позволяет значительно быстрее проводить исследование амниотической жидкости) и меньшая субъективность исследования.

Внедрение в широкую клиническую практику данных методов позволит оптимизировать тактику ведения беременности и расширить понимание генетических причин НИВП.

В связи с вышеизложенным, целью настоящего исследования явилось изучение роли хромосомных аномалий и оптимальных методов их генетического тестирования при установленном диагнозе НИВП.

Материалы и методы

Было проведено проспективное исследование, включавшее анализ данных 43 беременных, обратившихся на перинатальный консилиум ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» МЗ РФ с установленным диагнозом НИВП в гестационных сроках от 11 до 30 недель в период с сентября 2021 г. по ноябрь 2023 г. Ультразвуковые маркеры НИВП включали: отек воротникового пространства, кистозные гигромы шеи, генерализованный отек, асцит, гидроторакс. Все пациентки были консультированы генетиком на пренатальном консилиуме и госпитализированы во 2-е акушерское отделение патологии беременности с целью проведения ИПД. На пренатальном этапе проводились: анкетирование, общеклинические методы обследования, инструментальные методы диагностики, такие как экспертное ультразвуковое исследование с измерением максимальной систолической скорости кровотока в средней мозговой артерии, инфекционный скрининг и ИПД, включающая трансабдоминальный хориоцентез (ТХ) или трансабдоминальный амниоцентез (ТА).

После получения формы информированного согласия пациенткам была предложена ИПД. В условиях стационара проводилось взятие образов ворсин хориона (ВХ) или амниотической жидкости (АЖ) путем ТХ или ТА. ТХ и ТА выполнялись в сроках 11–14 и 15–30 недель беременности, соответственно. Полученный материал направлялся на инфекционный скрининг, который включал определение методом ПЦР парвовируса В19, вируса Эпштейна–Барр, цитомегаловируса, вирусов простого герпеса типов 1 и 2, и бактериологическое исследование АЖ. Первый этап генетической диагностики заключался в выявлении аномалий хромосом 13, 18, 21, Х, Y с помощью QF-ПЦР. В случае отсутствия основных анеуплоидий у плода на втором этапе проводилось ХМА. Во всех случаях в связи с риском контаминации материнским материалом, проводился QF-ПЦР биоматериала матери и плода (рис. 1).

В исследование не включены женщины с многоплодной беременностью, с НИВП, обусловленной нарушением ритма сердца плода, крестцово-копчиковой тератомой.

Были проанализированы течение и исходы беременностей в 3 группах, в зависимости от гестационного срока манифестации НИВП: Группа 1 – с 11 недель до 13 недель 6 дней (n=14); Группа 2 – с 14 недель до 21 недели 6 дней (n=13); Группа 3 – с 22 до 30 недель (n=16). Исходы беременностей вышеперечисленных групп были представлены прерыванием беременности по медицинским показаниям, антенатальной гибелью плода, живорождением с явлениями НИВП и живорождением без признаков НИВП. Клиническое наблюдение за пациентками проводилось путем изучения медицинской документации и с помощью телефонных опросов с последующим подтверждением информации в виде официальных документов из медицинских учреждений.

Геномную ДНК извлекали из ВХ и АЖ с использованием набора IGENatal kit согласно инструкции производителя. Исследование методом QF-ПЦР проводилось с помощью наборов ТУ 21.20.23-113-46482062-2021 на базе Института репродуктивной генетики ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» МЗ РФ.

ХМА выполняли с использованием системы GenoScan3000 на микроматрицах CytoScan Optima (Thermo Fisher Scientific, США) согласно протоколу производителя. Анализ полученных данных производился с помощью программного обеспечения ChАS («Сhromosome Аnalysis Suite»). Полученные CNV интерпретировались по пяти категориям, опираясь на критерии ACMG. При интерпретации в соответствии с рекомендациями оценивался размер, место расположения вариаций числа копий генов и генный состав. Анализ клинической значимости CNV проводился с использованием общедоступных баз, включая базу данных геномных вариантов (DGV), онлайн-менделевское наследование у человека (OMIM), ISCA, DECIPHER, а также данные мировой литературы. В отчет выносились патогенные и вероятно патогенные вариации числа копий генов; варианты неясной клинической значимости включались только при высоком соответствии с клинической картиной. Также проводилось обследование родительского биоматериала (периферическая кровь) с целью определения наследования CNV.

Статистический анализ

Данные были проанализированы с использованием программного обеспечения Microsoft Excel (США).  Качественные показатели выражены в абсолютных и относительных величинах (%), количественные показатели выражались в виде медианы (Me), интерквартильного размаха (Q1; Q3), среднего арифметического (М), стандартного отклонения (SD). Для проверки статистической значимости был использован точный тест Фишера. Уровень значимости p считали значимым при p<0.05. Однако, в связи с тем, что сравнивались 3 группы, была применена поправка Бонферрони. При попарном множественном сравнении групп между собой p считали значимым  при значении <0,017.

Для попарных сравнений использовали поправку Сидака.

Результаты

В рамках проведенного исследования были проанализированы клинические и анамнестические данные 43 беременных, включенных в исследование. Возраст пациенток был сопоставим в группах сравнения (табл.  1). Значение p во всех случаях сравнения >0,017.

Таблица 1. Распределение обследованных женщин по возрастным группам

Возраст

(лет)

Группа 1 (n=14)

Группа 2 (n=13)

Группа 3 (n=16)

p-value

абс.

%

абс.

%

абс.

%

18–34

11

78,6

12

92,3

14

87,5

0,651

35–45

3

21,4

1

7,7

2

12,5

Средний возраст

30,5±6,3

29,3±4,8

27,3±5,5

0,101

Данные репродуктивного анамнеза, представленные в таблице 2, были сопоставимы среди пациенток исследуемых групп. Значение p во всех случаях сравнения >0,017.

Таблица 2. Репродуктивный анамнез обследованных женщин

Исходы беременностей

Группа 1 (n=14)

Группа 2 (n=13)

Группа 3 (n=16)

p-value

абс.

%

абс.

%

абс.

%

Первобеременные

6

42,9

6

46,1

4

25

0,490

Повторнобеременные, первый случай НИВП

7

50

5

38,5

11

68,8

0,262

Повторнобеременные, второй случай НИВП

1

7,1

2

15,4

1

6,2

0,670

Ранняя стадия манифестации НИВП была установлена у 14 из 43 беременных (32,5%). Это были изменения, диагностированные на пренатальном скрининге I триместра в сроках от 11 недель до 13 недель 6 дней (группа 1). Во всех наблюдениях пациентки прошли консультацию генетика, была рекомендована ИПД. В среднем, срок диагностики при ранней манифестации НИВП составил 12 недель 5 дней. Образцы, исследованные в I триместре, включали в 14/14 (100%) случаях биоматериал ВХ. QF-ПЦР было выполнено во всех случаях. Хромосомные анеуплоидии были установлены в 10/14 (71,4%) случаях на основании анализа биоматериала плода: 6/14 (42,9%) – кариотип плода 45,Х0; 3/14 (21,4%) – трисомия 21; 1/14 (7,1%) – трисомия 18. В 4/14 (28,6%) случаях хромосомных анеуплоидий не было установлено, в связи с чем был выполнен ХМА биоматериала плодов, и в 1 из 4 случаев был диагностирован синдром Ди Джорджи. 

snimok_ekrana_2024-07-03_135631.png (35 KB)

Рис. 1. Диагностический поиск при НИВП

Манифестация НИВП в сроках более 14 недель была в 29/43 (67,4%) случаях: с 14 недель до 21 недели 6 дней (группа 2) – в 13/43 (30,2%) случаях, с 22 по 30 неделю (группа 3) – в 16/43 (37,2%) случаях (табл. 2). QF-ПЦР и ХМА были выполнены во всех случаях, и во всех 29 случаях хромосомных анеуплоидий, микроделеций и микродупликаций установлено не было (рис. 2).

snimok_ekrana_2024-07-03_135640.png (42 KB)

Рис. 2. Беременные с НИВП

Как видно из представленных данных, хромосомные нарушения были выявлены только у 11/14 (78,6%) пациентов группы 1, различия с группами 2 и 3 статистически значимы, p<0,001 (табл. 3).

Таблица 3. Выявляемость хромосомных аномалий в зависимости от срока манифестации НИВП

Сроки гестации

Группа 1

 (n=14)

Группа 2

 (n=13)

Группа 3

 (n=16)

 

p-value

Хромосомные нарушения

11 (78,6%)

0

0

<0,001

p1-2<0,001

p1-3<0,001

p2-3=1,000

Нормальный кариотип

3 (21,4%)

13 (100%)

16 (100%)

Данные сроков манифестации и исходов беременности плодов с НИВП отражены в таблице 4.

Таблица 4. Сроки манифестации НИВП и исходы беременностей

Исход/Группа

Группа 1 n=14

Группа 2

n=13

Группа 3

n=16

p-value

Прерывание по медицинским показаниям

11 (78,7%)

4 (30,8%)

0

<0,001

p1-2=0,032

p1-3<0,001

p2-3=0,021

Неразвивающаяся беременность

1 (7,1%)

0

0

0,628

Живорождение

2 (14,2%)

4 (30,8%)

9 (56,3%)

0,062

Антенатальная гибель плода

0

5 (38,4%)

7 (43,7%)

0,011

p1-2 = 0,010

p1-3 = 0,003

p2-3 = 0,988

Частота прерывания беременности по медицинским показаниям статистически значимо различалась в группах сравнения и была наибольшей в группе 1 и наименьшей – в группе 3. Частота неразвивающейся беременности была сопоставимой в группах сравнения. Частота живорождения была наибольшей в группе 3, однако различия не достигли уровня статистической значимости. Частота антенатальной гибели плода в группах 2 и 3 была статистически значимо выше, чем в группе 1.

Таким образом, в группе 1 хромосомные нарушения были установлены в 11/14 (78,6%) случаях – все эти беременности были прерваны по медицинским показаниям. В результате того, что в 3/14 (21,4%) случаях генетический фактор не был найден, беременности были пролонгированы.

В 2 из 3 случаях беременности протекали физиологично, признаки НИВП регрессировали, и произошло живорождение в сроках 35–36 недель детей без признаков водянки. В 1 из 3 случаев произошла антенатальная гибель плода в сроке 21 неделя беременности.

После получения результатов нормального молекулярного кариотипа в группе 2 в 4/13 (30,8%) случаях проведения повторного пренатального консилиума семейными парами было принято решение о прерывании беременности в связи с нарастанием тяжести НИВП, крайне неблагоприятным прогнозом для жизни плода. В 9/13 (69,2%) случаях беременность была пролонгирована, однако в 5/13 (38,4%) случаях была диагностирована антенатальная гибель плода (в 2 из 5 случаев причина НИВП, вероятно, была обусловлена наличием цитомегаловирусной и парвовирусной инфекций). Медиана срока беременности при антенатальной гибели составила 24 недели (23; 27).

В 4/13 (30,8%) случаях беременности протекали без осложнений. В 2 из 4 случаев явления водянки регрессировали, и в сроке 35 недель произошли преждевременные роды – дети растут и развиваются согласно возрасту. В 1 из 4 случаев произошли своевременные оперативные роды в сроке беременности 38 недель. Родился живой доношенный мальчик без признаков водянки. В 1 из 4 случаев в связи с ухудшением течения НИВП, неблагоприятным прогнозом для жизни плода после диагностики нормального кариотипа было предложено прерывание беременности; однако семья от прерывания беременности отказалась, и в сроке 26 недель в связи с преждевременным излитием околоплодных вод произошли преждевременные самопроизвольные роды. Ребенок прожил 7 суток.

После получения результатов об отсутствии хромосомной патологии в группе 3 все беременности были пролонгированы в связи с отсутствием грубых пороков развития плода. В 7/16 (43,7%) случаях произошла антенатальная гибель плода; так медиана срока беременности при антенатальной гибели составила 26 недель (24; 27). В 9/16 (56,3%) случаях имело место живорождение, медиана срока родоразрешения составила 38 недель (34; 39); оценка по шкале Апгар на 1-й минуте – от 1 до 8 баллов, на 5-й минуте – от 3 до 8 баллов; новорожденные наблюдались и проходили лечение в отделениях интенсивной терапии. В 5 из 9 случаев была зафиксирована младенческая смертность в возрасте от 3 ч жизни до 9 месяцев; из них 4 случая относились к ранней неонатальной смертности, 1 случай –  к младенческой смертности. В 1 случае у ребенка был диагностирован кистозно-аденоматозный порок верхней доли левого легкого, однако в связи с осложнением текущего заболевания, особенностями послеоперационного периода была зафиксирована поздняя неонатальная смерть на 15-е сутки жизни. В 4 из 9 случаев к моменту рождения детей явления водянки регрессировали; были рождены здоровые дети с оценкой по шкале Апгар на 1-й минуте – от 6 до 8 баллов, на 5-й минуте – от 7 до 8 баллов; в настоящее время растут и развиваются согласно возрасту. В данных наблюдениях генетической причины НИВП на данном этапе диагностировано не было.

Обсуждение

В результате проведенного исследования было установлено, что хромосомные аномалии представляют собой наиболее распространенную причину НИВП в I триместре и связаны с более высоким риском перинатальных потерь, что согласуется с данными исследований других авторов [5, 12, 16, 19]. Среди хромосомных анеуплоидий наиболее часто встречались синдром Шерешевского–Тернера (13,9%), синдром Дауна (6,9%) и синдром Эдвардса (2,3%), что также соответствует результатам многоцентровых исследований [6, 9]. Согласно данным мировой литературы, при гестационном сроке более 14 недель хромосомные нарушения при НИВП встречаются в 4–20% случаев [7, 19]. В нашем исследовании у пациенток со сроком беременности более 14 недель не было диагностировано хромосомных аномалий. Было установлено, что уровень живорождения выше в тех случаях НИВП, когда клинические проявления возникали на более поздних сроках, что также согласуется с данными других исследователей [6, 9, 16, 17, 19].

Проведенное исследование продемонстрировало необходимость проведения ИПД, место и преимущества каждого из методов генетического тестирования, проводимого пренатально при НИВП. Выбор метода тестирования напрямую зависит от сроков манифестации, наличия дополнительных ультразвуковых маркеров хромосомных заболеваний или пороков развития плода, сроков проведения ИПД, а также дальнейшей тяжести течения НИВП. Внедрение метода ХМА увеличивает количество обнаруженных хромосомных аномалий. Основываясь на вышеперечисленных данных, возможно подтверждение или исключение хромосомной патологии в кратчайшие сроки, что помогает оптимизировать тактику ведения текущей беременности в каждом конкретном случае. Однако данные методы не позволяют обнаружить патологию, вызванную нарушением функции одного гена, то есть  не позволяют диагностировать моногенные заболевания: аутосомно-доминантные (в частности РАСопатии) или аутосомно-рецессивные, которые могут являться причиной НИВП [6, 17]. Таким образом, при верификации нормального молекулярного кариотипа, дальнейший диагностический поиск будет продолжаться в направлении проведения секвенирования полного экзома, что улучшит выявляемость причин, лежащих в основе НИВП [4, 20–22].

Заключение

В связи с разными сроками манифестации, многообразием клинических проявлений и возможных исходов при НИВП, генетическое консультирование супружеских пар в каждом конкретном случае должно основываться не только на полученных данных о нормальном кариотипе, а также учитывать наличие аномалий развития плода, их совместимости с жизнью ребенка, тяжесть водянки на антенатальном этапе, в том числе при динамическом наблюдении. Данная информация помогает определить прогноз для плода, возможности терапии и целесообразность пролонгирования текущей беременности.  Данные генетического тестирования особенно актуальны при консультировании семейных пар не только по поводу прогноза текущей беременности, но и для оценки риска повтора НИВП при последующих беременностях в данной семье.

Литература

  1. Guo D., He S., Lin N., Dai Y., Li Y., Xu L., et al. Genetic disorders and pregnancy outcomes of non-immune hydrops fetalis in a tertiary referral center. BMC Med Genomics. 2023; 16(1):83.
  2. Society for Maternal-Fetal Medicine (SMFM), Norton M.E., Chauhan S.P., Dashe J.S. Society for maternal-fetal medicine (SMFM) clinical guideline #7: nonimmune hydrops fetalis. Am J Obstet Gynecol. 2015; 212(2):127–39.
  3. Iskaros J., Jauniaux E., Rodeck C. Outcome of nonimmune hydrops fetalis diagnosed during the first half of pregnancy. Obstet Gynecol. 1997; 90(3):321–5.
  4. Sparks T.N., Lianoglou B.R., Adami R.R., Pluym I.D., Holliman K., Duffy J., et al. Exome Sequencing for Prenatal Diagnosis in Nonimmune Hydrops Fetalis. N Engl J Med. 2020; 383(18):1746–56.
  5. Кадырбердиева Ф.З., Шмаков Р.Г., Бокерия Е.Л., Тетруашвили Н.К., Костюков К.В., Донников А.Е. Б.Д.М. Неиммунная водянка плода: основные причины. Акушерство и гинекология. 2019; 11_2019:186–91.
  6. Cherian A.G., Kamath V., Srivastava V., Danda S., Sebastian T., Beck M.M. Spectrum of Chromosomal Abnormalities Detected by Conventional Cytogenetic Analysis Following Invasive Prenatal Testing of Fetuses with Abnormal Ultrasound Scans. J Obstet Gynaecol India. 2022; 72(Suppl 1):209–16.
  7. Beke A., Joó J.G., Csaba A., Lázár L., Bán Z., Papp C., et al. Incidence of Chromosomal Abnormalities in the Presence of Fetal Subcutaneous Oedema, Such as Nuchal Oedema, Cystic Hygroma and Non-Immune Hydrops. Fetal Diagn Ther. 2009; 25(1):83–92.
  8. Laterre M., Bernard P., Vikkula M., Sznajer Y. Improved diagnosis in nonimmune hydrops fetalis using a standardized algorithm. Prenat Diagn. 2018; 38(5):337–43.
  9. He S., Wang L., Pan P., Wei H., Meng D., Du J., et al. Etiology and Perinatal Outcome of Nonimmune Hydrops Fetalis in Southern China. AJP Rep. 2017; 7(2):e111–5.
  10. Heinonen S., Ryynänen M., Kirkinen P. Etiology and outcome of second trimester non-immunologic fetal hydrops. Acta Obstet Gynecol Scand. 2000; 79(1):15–8.
  11. Hutchison A.A., Drew J.H., Yu V.Y., Williams M.L., Fortune D.W., Beischer N.A. Nonimmunologic hydrops fetalis: a review of 61 cases. Obstet Gynecol. 1982; 59(3):347–52.
  12. Meng D., Li Q., Hu X., Wang L., Tan S., Su J., et al. Etiology and Outcome of non-immune Hydrops Fetalis in Southern China: report of 1004 cases. Sci Rep. 2019; 9(1):10726.
  13. Derderian S.C., Jeanty C., Fleck S.R., Cheng L.S., Peyvandi S., Moon-Grady A.J., et al. The many faces of hydrops. J Pediatr Surg. 2015; 50(1):50–4; discussion 54.
  14. Berger V.K., Sparks T.N., Jelin A.C., Derderian C., Jeanty C., Gosnell K., et al. Non-Immune Hydrops Fetalis: Do Placentomegaly and Polyhydramnios Matter? J Ultrasound Med. 2018; 37(5):1185–91.
  15. Gedikbasi A., Oztarhan K., Gunenc Z., Yildirim G., Arslan O., Yildirim D., et al. Preeclampsia due to fetal non-immune hydrops: mirror syndrome and review of literature. Hypertens pregnancy. 2011; 30(3):322–30.
  16. Кадырбердиева Ф.З., Шмаков Р.Г., Бокерия Е.Л., Костюков К.В. Т.Н.К. Эффективность применения алгоритма обследования на антенатальном этапе при неиммунной водянке плода. Акушерство и гинекология. 2020; 7_2020:71–8.
  17. Chainarong N., Muangpaisarn W., Suwanrath C. Etiology and outcome of non-immune hydrops fetalis in relation to gestational age at diagnosis and intrauterine treatment. J Perinatol. 2021; 41(10):2544–8.
  18. Faucett W.A., Savage M. Chromosomal microarray testing. JAAPA. 2012; 25(1):65–6.
  19. Sileo F.G., Kulkarni A., Branescu I., Homfray T., Dempsey E., Mansour S., et al. Non-immune fetal hydrops: etiology and outcome according to gestational age at diagnosis. Ultrasound Obstet Gynecol. 2020; 56(3):416–21.
  20. Al-Kouatly H.B., Shivashankar K., Mossayebi M.H., Makhamreh M., Critchlow E., Gao Z., et al. Diagnostic yield from prenatal exome sequencing for non-immune hydrops fetalis: A systematic review and meta-analysis. Clin Genet. 2023; 103(5):503–12.
  21. Zhou X., Zhou J., Wei X., Yao R., Yang Y., Deng L., et al. Value of Exome Sequencing in Diagnosis and Management of Recurrent Non-immune Hydrops Fetalis: A Retrospective Analysis. Front Genet. 2021; 12:616392.
  22. Люшнина Д.Г., Тетруашвили Н.К., Шубина Е., Зарецкая Н.В., Толмачева Е.Р., Свирепова К.А., et al. Лизосомные болезни накопления как одна из причин неиммунной водянки плода. Акушерство и гинекология. 2023; 12_2023:78–86.

Поступила 01.04.2024

Принята в печать 28.06.2024

Об авторах / Для корреспонденции

Люшнина Дарья Геннадьевна, аспирант, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, +7(906)308-60-78, d_lyushnina@oparina4.ru, https://orcid.org/0009-0004-3160-8737

Тетруашвили Нана Картлосовна, д.м.н., руководитель 2-го отделения акушерского патологии беременности, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, +7(495)438-14-77, tetrauly@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-9201-2281

Шубина Екатерина, к.б.н., заведующая лабораторией анализа геномных данных Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, +7(495)531-44-44,  e_shubina@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0003-4383-7428

Рогачева Маргарита Сергеевна, м.н.с. лаборатории анализа геномных данных Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, +7(495)531-44-44,  m_rogacheva@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-2495-2554

Зарецкая Надежна Васильевна, к.м.н., заведующая лабораторией клинической генетики Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, +7(495)438-24-11, znadezda@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0001-6754-3833

Большакова Анна Сергеевна, врач-генетик отделения клинической генетики Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, +7(495)438-24-11,  a_bolshakova@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-7508-0899

Барков Илья Юрьевич, к.м.н. заведующий лабораторией пренатального ДНК-скрининга Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, +7(495)438-24-10,  i_barkov@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0001-6297-2073

Саделов Игорь Олегович, врач-генетик лаборатории анализа геномных данных Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, +7(495)438-24-10, i_sadelov@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-5144-6307

Пак Виктория Сергеевна, аспирант, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, +7(913)897-28-49, v_pak@oparina4.ru, https://orcid.org/0009-0002-1444-9071

Бокерия Екатерина Леонидовна, д.м.н., н.с. 2-го отделения патологии новорожденных и недоношенных детей, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, +7(495)438-27-05,  e_bokeriya@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-8898-9612

Трофимов Дмитрий Юрьевич, д.б.н., профессор РАН, чл.-корр. РАН, директор Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4, +7(495)438-49-51, d_trofimov@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-1569-8486

Автор, ответственный за переписку: Дарья Геннадьевна Люшнина, d_lyushnina@oparina4.ru

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.