«Акушерство и Гинекология» ISSN 2412-5679
NK-клетки периферической крови у пациенток с рубцом на матке и плацентарной адгезивно-инвазивной патологией
Цель: Оценить цитотоксическую активность NK-клеток периферической крови беременных в отношении клеток трофобласта при наличии рубца на матке и плацентарной адгезивной инвазивной патологии (ПАИП) и без нее.
Материалы и методы: В исследование включено 18 беременных женщин, которые составили 3 группы: с рубцом на матке после кесарева сечения и ПАИП (n=6, основная группа), с рубцом на матке без признаков приращения плаценты (n=6, группа сравнения), и 6 беременных женщин без рубца на матке (n=6, группа контроля). Включение женщин в исследование осуществлялось в сроки 28–32 недели беременности. У всех исследуемых проведена оценка цитотоксичекой активности NK-клеток периферической крови в отношении клеток трофобласта (JEG-3).
Результаты: Цитотоксическая активность pNK-клеток в группе с ПАИП не имела различий по сравнению с группами сравнения и контроля. Однако цитотоксическая активность pNK ниже в группе беременных женщин, перенесших кесарево сечение в анамнезе, по сравнению с физиологической беременностью (p=0,022).
Заключение: Данные настоящего исследования позволяют предположить, что сниженная цитотоксическая активность pNK-клеток у женщин с рубцом на матке без ПАИП обусловлена наличием механизма, препятствующего развитию приращения плаценты у ряда пациенток из группы риска.
Ключевые слова: естественные клетки киллеры, NK-клетки, цитотоксическая активность, инвазия, вневорсинчатый трофобласт (ВВТ), приращение плаценты.
Вклад авторов: Все авторы внесли существенный вклад в разработку концепции, проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией: Поникарова Н.Ю. – сбор и обработка материалов исследования, написание текста статьи; Давыдова А.А. – работа с клеточной культурой и обработка биоматериала; Шелепова Е.С., Осипова Н.А. – сбор и обработка материалов исследования; Соколов Д.И., Михайлова В.А., Сельков С.А. – редактирование, внесение окончательной правки; Оганян К.А. – обзор литературы, подготовка работы к публикации; Зазерская И.Е. – концепция и дизайн исследования, редактирование теста статьи.
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование: Исследование проведено при поддержке ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Министерства здравоохранения Российской Федерации. Государственное задание 123 021 000 051-2 «Разработка шкалы по оценке риска патологической инвазии плаценты у беременных с рубцом на матке».
Одобрение Этического комитета: Протокол исследования был одобрен локальным этическим комитетом ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова» Министерства здравоохранения Российской Федерации (№2211-22 из протокола заседания No 11-22 от 28 ноября 2022 г.).
Согласие пациентов на публикацию: Пациенты подписали информированное согласие на публикацию своих данных.
Обмен исследовательскими данными: Данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны по запросу у автора, ответственного за переписку, после одобрения ведущим исследователем.
Для цитирования: Поникарова Н.Ю., Давыдова А.А., Шелепова Е.С., Осипова Н.А., Соколов Д.И., Михайлова В.А., Оганян К.А., Сельков С.А., Зазерская И.Е. NK-клетки периферической крови у пациенток с рубцом на матке и плацентарной адгезивно-инвазивной патологией.
Акушерство и гинекология. 2025; 2:
На сегодняшний день патогенетические механизмы развития плацентарной адгезивно-инвазивной патологии (ПАИП) остаются не до конца изученными [1]. Основным предиктором развития ПАИП считается рубец на матке после кесарева сечения в анамнезе, однако не во всех случаях развивается аномальная инвазия плаценты. По мнению ряда авторов, в основе нарушения ангиогенеза и гиперваскуляризации лежит нарушение иммунологической толерантности на границе мать-плацента-плод [2].
NK-клетки (natural killer cells, естественные клетки киллеры) являются компонентами врожденной иммунной системы, которые обеспечивают защиту от инфекций и развития опухолей, однако их функции при беременности очень разнообразны [3].
uNK-клетки (uterine natural killer cells, маточные NK-клетки) опосредуют баланс между активацией и угнетением инвазии вневорсинчатого трофобласта (ВВТ), регулируют ремоделирование спиральных артерий путем синтеза многочисленных хемокинов, цитокинов а также благодаря цитотоксической функции [4]. Поскольку uNK-клетки участвуют в ключевых этапах децидуализации, имплантации и плацентации, широкое распространение получили исследования периферических и тканевых NK-клеток при патологии беременности [5].
Традиционным является представление о том, что у пациентов с привычным невынашиванием повышено содержание uNK-клеток [6, 7]. Исследования показали, что увеличение uNK-клеток у пациенток с привычным невынашиванием вызывает повышенную васкуляризацию и нарушение ремоделирования спиральных артерий, что приводит к преждевременному усилению плацентарного кровотока и чрезмерному окислительному стрессу и, как следствие, к прерыванию беременности [8]. Другие авторы указывают на повышение активности pNK-клеток (периферических NK-клеток крови) при бесплодии или привычном выкидыше [9]. В то же время, в литературе встречаются убедительные данные о том, что дефицит NK-клеток или изменение их функции в сторону повышения синтеза фактора некроза опухоли (TNF)α и интерферона (IFN) γ и снижения секреции сосудистого эндотелиального фактора роста (VEGF) и плацентарного фактора роста (PLGF) приводит к нарушению ремоделирования сосудов при преэклампсии [10].
Учитывая имеющиеся данные о повышении сывороточных проангиогенных и снижении антиангиогенных факторов при ПАИП, которые в I триместре беременности синтезируются NK-клетками [8], интерес представляет изучение и оценка функции NK-клеток при аномальной инвазии плаценты. Изменение плотности uNK-клеток в зоне маточно-плацентарного комплекса при ПАИП описано в единичных работах [11–13].
Единое происхождение uNK- и pNK-клеток путем дифференцировки из гемопоэтических клеток in situ, а также сходство их фенотипических характеристик [14] позволяет использовать pNK-клетки для изучения взаимодействия с клетками хориона. Но, конечно, следует учитывать и различия рNK и uNK-клеток, касающиеся мембранных рецепторов CD16 и CD56.
Цель исследования: оценить цитотоксическую активность NK-клеток периферической крови беременных в отношении клеток трофобласта при ПАИП.
Материалы и методы
В контролируемое поперечное исследование с ретроспективным анализом включено 18 женщин в сроках 28–32 недели беременности. Основную группу составили 6 пациенток с рубцом на матке после кесарева сечения и ПАИП. В группы сравнения и контроля включены 6 беременных женщин с рубцом на матке без признаков приращения плаценты и 6 беременных женщин без рубца на матке, соответственно.
Критерии включения в исследование: возраст пациенток на момент включения 25–45 лет, спонтанно наступившая беременность, хорион по передней стенке матки по данным I скрининга, наблюдение в женской консультации с 11 недель беременности, подписание добровольного информированного согласия. Критерии невключения: использование вспомогательных репродуктивных технологий, привычный выкидыш, истмико-цервикальная недостаточность, плацентомегалия, существовавший ранее или развившийся во время беременности сахарный диабет, гипертензивные заболевания, преэклампсия, хроническая сердечная недостаточность, хроническая болезнь почек, антифосфолипидный синдром, обострение хронических и острые воспалительные заболевания.
Критериями включения в основную группу явились ультразвуковые и магнитно-резонансные признаки приращения плаценты: согласно действующим протоколам ведения беременности с аномалиями плацентации [15, 16].
Исследование одобрено этическим комитетом ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.
Ультразвуковое исследование выполнено на аппарате Voluson E10, GE Healthcare. Пациенткам основной группы выполнена магнитно-резонансная томография на аппарате с индукцией магнитного поля 1,5 Тл (Siemens, Германия) в сроки от 28 до 32 недель беременности в соответствии с рекомендациями, разработанными сотрудниками научно-исследовательской группы лучевых методов исследования в перинатологии и педиатрии ФГБУ НМИЦ им. В.А. Алмазова [17].
Включение пациенток в исследование осуществлялось на базе консультативно-диагностического отделения для женщин Перинатального Центра ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» в сроки 32–38 недель беременности после сбора анамнеза, общего и акушерского осмотра. Взятие венозной крови у пациенток проводилось утром натощак в вакуумную пробирку с гепарином.
Оценка цитотоксичекой активности NK-клеток периферической крови в отношении клеток трофобласта (JEG-3) проведена по методике, разработанной в отделе иммунологии и межклеточных взаимодействий НИИ АГиР им. Д.О. Отта (зав. отделом иммунологии и межклеточных взаимодействий, засл. деятель науки РФ, д.м.н., проф. С.А. Сельков). В качестве мишеней для NK-клеток использовали клетки трофобласта линии JEG-3 (АТСС, Manssas, VA, США), представляющие основные характеристики клеток трофобласта I триместра беременности. Клетки культивировали в среде DMEM (Биолот, Россия) с добавлением 10% инактивированной эмбриональной телячьей сыворотки (ЭТС), 100 ЕД/мл пенициллина, 100 мкг/мл стрептомицина, 2 мML-глутамина, 1% заменимых аминокислот и 1 мМ пирувата натрия (Sigma-Aldrich, США). Мононуклеарные клетки периферической крови пациенток, содержащие NK-клетки, выделяли стандартным методом скоростного центрифугирования на градиенте плотности фиколл-верографина (Histopaque-1077, Sigma, США). Для эксперимента клетки трофобласта дезинтегрировали, обрабатывали сукцинимидиловым эфиром карбоксифлуоресцеина (CFSE) и инкубировали в течение 4 ч во влажной атмосфере при t=37°С при 5% CO2 с мононуклеарными клетками периферической крови в соотношении «эффектор:мишени» 10:1. Часть клеток трофобласта инкубировали в аналогичной культуральной среде без добавления мононуклеарных клеток для определения базовой гибели клеток трофобласта. После инкубации клетки обрабатывали раствором пропидия иодида в концентрации 2 мкг/мл при 4°С в течение 10 минут. Анализ гибели клеток-мишеней проводили с помощью проточного цитофлуориметра FACSCantoll (Becton Dickinson, USA) (PI+) [18]
Статистический анализ
Статистический анализ проведен с помощью программы IBM SPSS Statistics Version 26.0. Количественные переменные проверены на нормальность распределения с помощью критерия Шапиро–Уилка. Количественные показатели с ненормальным распределением описаны с помощью медианы (Me) и межквартильного размаха (Q1–Q3). Сравнение групп выполнено с помощью критерия Краскела–Уоллеса с поправкой на множественные сравнения Бонферони.
Результаты
Беременные женщины исследуемых групп сопоставимы по возрасту, сроку беременности и паритету родов, но различаются по паритету беременностей, количеству внутриматочных вмешательств и операций кесарева сечения в анамнезе (таблица). Беременные основной группы (с рубцом на матке и ПАИП) имели в анамнезе большее количество беременностей (p=0,002), выскабливаний полости матки по поводу искусственного прерывания беременности (p=0,023) и операций кесарева сечения (p=0,02), чем женщины с нормальной беременностью, но не имели различий с группой сравнения. Угрожающий выкидыш в I триместре чаще встречался в основной группе, чем в группах сравнения и контроля (p=0,027).
Таблица. Клиническая характеристика беременных в исследуемых группах |
|||||||
Показатель |
Исследуемая группа |
p
|
|||||
Основная группа (n=6) |
Группа сравнения (n=6) |
Группа контроля (n=6) |
|||||
Me |
Q1–Q3 |
Me |
Q1–Q3 |
Me |
Q1–Q3 |
||
Возраст беременной |
39,5 |
38–42 |
32 |
28–35 |
32 |
30–33 |
0,125 |
Срок родов |
37,5 |
37–38 |
38 |
37–38 |
38 |
38–38 |
0,675 |
Паритет беременностей |
4,5 |
4–6 |
2,5 |
2–3 |
1,5 |
1–2 |
0,003* p3-1=0,002 p3-2=0,53 p2-1=0,132
|
Паритет родов |
3,5 |
2–4 |
3 |
2–4 |
1,5 |
1–2 |
0,076 |
Выскабливание полости матки в анамнезе |
2 |
1–3 |
1 |
0–2 |
0 |
0–0 |
0,027* p3-1=0,023 p3-2=0,299 p2-1=0,926 |
Кесарево сечение в анамнезе |
1,5 |
1–2 |
1 |
1–1 |
0 |
0–0 |
0,022* p3-1=0,02 p3-2=0,18 p2-1=1,0 |
Угроза прерывания беременности |
3,5 |
2–4 |
1 |
0–1 |
0,5 |
0–1 |
0, 012* p2-1=0,032 p3-1=0,027 p3-2=1,0 |
Примечание. *Статистическая значимость p<0,05 (критерий Краскела–Уоллеса); 3-1/2-1/3-2 – попарные сравнения, где 1 – основная группа, 2 – группа сравнения, 3 – группа контроля. |
При сопоставлении цитотоксической активности pNK-клеток в отношении клеток трофобласта в исследуемых группах выявлено, что цитотоксическая активность NK-клеток выше в группе здоровых беременных с интактным миометрием, чем у женщин с рубцом на матке (p=0,022). Однако по результатам настоящего исследования не получено данных о различиях цитотоксической активности в сравнении с основной группой (рисунок).
Рисунок. Цитотоксическая активность NK-клеток в исследуемых группах.
Обсуждение
Вопросы этиологии и патогенеза ПАИП на сегодняшний день остаются спорными. Участие uNK-клеток в процессе ремоделировании спиральных, радиальных артерий и инвазии клеток трофобласта [12, 19], позволяет заподозрить их дисфункцию при ПАИП.
По данным литературы выделяется две главные субпопуляции NK-клеток при беременности: в периферической крови беременных женщин 90% NK-клеток (pNK) в меньшей степени экспрессируют CD56 (CD56dim) и в большей степени – CD16 (CD16+bright). CD 16+ обладают сильной цитотоксической активностью в отношении опухолевых и вирус-инфицированных клеток. Преимущественная экспрессия CD56 (CD56bright) характерна для uNK-клеток, или маточных киллеров, которые локализуются в децидуальной ткани и в эндометрии и производят цитокины TNFα и IFNγ [20]. На границе мать-плацента плод в начале беременности uNK-клетки преобладают среди лимфоцитов, составляют 70% от общего количества лимфоцитов в эндометрии и постепенно снижаются ко II триместру [21]. Недавние исследования показали, что источником uNK-клеток являются предшественники pNK-клеток, что позволяет использовать последние для изучения функции при патологии беременности [22].
В присутствии клеток трофобласта NK-клетки способны изменять экспрессию мембранных рецепторов и, следовательно, свои функции [23]. Так, например, увеличение количества pNK-клеток с фенотипом CD56dim, обладающих более высокой цитотоксической активностью, и снижение числа CD56bright, а также повышение экспрессии активирующих рецепторов NKp46 и NKp30, перфорина и гранзимов pNK-клетками ассоциировано с привычным выкидышем [24].
Прежде всего, функциональные характеристики uNK-клеток зависят от взаимодействий с клетками-мишенями через ингибирующие или активирующие рецепторы [4]. Цитокины на границе мать-плацента-плод могут как усиливать, так и снижать цитотоксический потенциал NK-клеток [25]. С помощью неклассических белков главного комплкса гистосовместимости (MHC), таких как человеческие лейкоцитарные антигены (HLA)-C, HLA-G и HLA-E, клетки трофобласта взаимодействуют с иммуноглобулиноподобными рецепторами клеток-киллеров (KIR), лейкоцитарными иммуноглобулиноподобными рецепторами (LILR) и рецепторами естественной киллерной группы (NKG2), и изменяют функцию uNK-клеток [26]. Когда клетки ВВТ, которые экспрессируют HLA-C и HLA-E, взаимодействуют с KIR и NKG2-рецепторами на uNK-клетках, они блокируют цитотоксический ответ NK-клеток на инвазивный трофобласт [4]. С другой стороны, клетки ВВТ с экспрессией HLA-C, при взаимодействии с рецепторами активации uNK-клеток (KIR2DS1 или KIR2DS4), индуцируют секрецию гранулоцитарно-макрофагального и колониестимулирующего факторов (GM-CSF), которые способствуют инвазии клеток трофобласта [8].
В литературе встречаются единичные работы с количественной оценкой содержания NK-клеток в крови беременных с ПАИП [12], а исследований, описывающих функциональную активность pNK-клеток при приращении плаценты, нами не найдено. Некоторые исследования указывают на слабую экспрессию uNK-клеток в децидуальной оболочке биоптатов плацентарного ложа у женщин с ПАИП по сравнению с беременными без патологии плацентации [13, 27]. Другими авторами показано не только снижение экспрессии uNK-клеток в плацентарном ложе при ПАИП, но и прямая положительная корреляция с факторами риска аномальной инвазии и антиангиогенными факторами по сравнению с женщинами контрольной группы [12].
В проведенном нами исследовании выявлено, что цитотоксическая активность pNK-клеток в отношении клеток трофобласта линии JEG-3 выше у женщин с физиологической беременностью без рубца на матке, чем у женщин с кесаревым сечением в анамнезе, но различий в сравнении с основной группой не получено. Более низкая цитотоксическая активность NK-клеток у женщин, перенесших кесарево сечение в анамнезе, по сравнению с интактным миометрием, вероятно, ассоциирована с особенностями цитотоксической активности NK-клеток на границе мать-плацента-плод в области рубца на матке без признаков аномальной инвазии трофобласта. В более ранних исследованиях Skret-Magierlo J. et al. показано, что у пациенток при повторном кесаревом сечении с нормальной плацентацией наблюдается более высокая экспрессия CD56+ клеток в рубцовой ткани, по сравнению с децидуальной оболочкой пациенток, перенесших плановое кесарево сечение впервые, но функциональная активность клеток в данном исследовании не оценена [28].
При взаимодействии HLA-G клеток трофобласта и рецептора KIR2DL4 запускается синтез проангиогенных и провоспалительных факторов. Посредством данного взаимодействия индуцируется продукция NK-клеток, которые обладают низкой цитотоксичностью, но активно продуцируют провоспалительные цитокины, ангиогенные факторы, такие как VEGF и ангиопоэтины [29]. Также в результате данного взаимодействия NK-клетки синтезируют протеолитические факторы, такие как металлопротеиназы, которые стимулируют инвазию трофобласта и трансформацию спиральных артерий [30]. Таким образом, можно предположить, что у пациенток с ПАИП при сопоставимой с группами беременных без приращения плаценты цитотоксической активности NK-клеток изменяется продукция проангиогенных факторов и протеолитических ферментов, которые, по мнению ряда авторов, патогенетически обуславливают приращение плаценты [30, 31].
Результаты настоящего исследования согласуются с данными литературы о том, что увеличение частоты беременностей, выскабливаний полости матки и кесарева сечения в анамнезе ассоциировано с риском приращения плаценты в последующие беременности [32]. По мнению некоторых авторов, снижение dNK-клеток первично обусловлено повреждением миометрия в результате предыдущих операций кесарева сечения [33]. В других исследованиях показано, что при ПАИП периваскулярная инфильтрация иммунных клеток, в том числе uNK-клеток, характерна не только для ремоделированных сосудов в области маточно-плацентарного контакта, но и для сосудов миометрия, не контактирующего с трофобластом, что говорит о паракринных механизмах инвазии трофобласта [11]. Важно отметить, что uNK-клетки обуславливают первоначальные структурные изменения маточно-плацентарных сосудов, которые начинаются до инвазии трофобласта, что может свидетельствовать о дисфункции NK-клеток в патогенезе ПАИП [34].
Заключение
В настоящем исследовании впервые проанализирована цитотоксическая активность pNK-клеток у женщин с наличием рубца на матке и ПАИП в сравнении с беременными с рубцом на матке, но без приращения плаценты и физиологической беременностью без рубца на матке. Более низкая цитотоксическая активность pNK-клеток у женщин с рубцом на матке без признаков аномальной инвазии трофобласта по сравнению с физиологической беременностью позволяет предположить, что в патогенезе приращения плаценты значимую роль играет дисфункция NK-клеток.
Повреждение матки вследствие предыдущих операций кесарева сечения инициирует морфологические и функциональные изменения в децидуальной оболочке матки. Вероятно, сравнительно низкая цитотоксическая активность pNK-клеток в группе с рубцом на матке без аномальной инвазии плаценты ассоциирована с наличием механизма, препятствующего приращению плаценты в зоне рубца. Таким образом, интерес представляет выявление женщин из групп риска ПАИП с изменением цитотоксической активности NK-клеток для прогнозирования приращения плаценты на более ранних сроках беременности.
Литература
- Kobayashi H, Matsubara S, Yoshimoto C, Shigetomi H, Imanaka S. Current understanding of the pathogenesis of placenta accreta spectrum disorder with focus on mitochondrial function. J Obstet Gynaecol Res 2024;50:929–40. https://doi.org/10.1111/jog.15936.
- Xu X, Zhou Y, Wei H. Roles of HLA-G in the Maternal-Fetal Immune Microenvironment. Front Immunol 2020;11:592010. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.592010.
- Kanter JR, Mani S, Gordon SM, Mainigi M. Uterine natural killer cell biology and role in early pregnancy establishment and outcomes. FS Rev 2021;2:265–86. https://doi.org/10.1016/j.xfnr.2021.06.002.
- Gaynor LM, Colucci F. Uterine Natural Killer Cells: Functional Distinctions and Influence on Pregnancy in Humans and Mice. Front Immunol 2017;8:467. https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.00467.
- El-Badawy O, Helmy AS, Abbas AM, Zahran AM, Afifi NA, Abdel-Rahim MH. Concordance between peripheral and decidual NK cell subsets and killer immunoglobulin-like receptors in women with recurrent spontaneous miscarriages. J Reprod Immunol 2020;140:103130. https://doi.org/10.1016/j.jri.2020.103130.
- Chen X, Zhang T, Liu Y, Cheung WC, Zhao Y, Wang CC, et al. Uterine CD56+ cell density and euploid miscarriage in women with a history of recurrent miscarriage: A clinical descriptive study. Eur J Immunol 2021;51:487–9. https://doi.org/10.1002/eji.202048868.
- Cooper S, Laird SM, Mariee N, Li TC, Metwally M. The effect of prednisolone on endometrial uterine NK cell concentrations and pregnancy outcome in women with reproductive failure. A retrospective cohort study. J Reprod Immunol 2019;131:1–6. https://doi.org/10.1016/j.jri.2018.10.001.
- Xie M, Li Y, Meng Y-Z, Xu P, Yang Y-G, Dong S, et al. Uterine Natural Killer Cells: A Rising Star in Human Pregnancy Regulation. Front Immunol 2022;13. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.918550.
- Expression of natural cytotoxicity receptor NKp46 on peripheral blood natural killer cells in women with a history of recurrent implantation failures - Dons’koi - 2021 - Journal of Obstetrics and Gynaecology Research - Wiley Online Library n.d. https://obgyn.onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/jog.14631 (accessed June 5, 2024).
- Deer E, Herrock O, Campbell N, Cornelius D, Fitzgerald S, Amaral LM, et al. The role of immune cells and mediators in preeclampsia. Nat Rev Nephrol 2023;19:257–70. https://doi.org/10.1038/s41581-022-00670-0.
- Hecht JL, Karumanchi SA, Shainker SA. Immune cell infiltrate at the utero-placental interface is altered in placenta accreta spectrum disorders. Arch Gynecol Obstet 2020;301:499–507. https://doi.org/10.1007/s00404-020-05453-1.
- Cross-Talk between Mucosal-Associated Invariant T, Natural Killer, and Natural Killer T Cell Populations is Implicated in the Pathogenesis of Placenta Accreta Spectrum - PubMed n.d. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36997764/ (accessed June 11, 2024).
- AbdelFattah S, Morsy M, Ahmed AM, Abdelsalam H, Hosny G. Microcellular approach for the pathogenesis of placenta accreta spectrum inflammatory versus apoptotic pathways; a thorough look on Treg, dNK and VEGF. Pathol - Res Pract 2024;254:155153. https://doi.org/10.1016/j.prp.2024.155153.
- Marron K, Harrity C. Endometrial lymphocyte concentrations in adverse reproductive outcome populations. J Assist Reprod Genet 2019;36:837–46. https://doi.org/10.1007/s10815-019-01427-8.
- Pathological attachment of the placenta (placenta previa and accreta): Draft clinical guidelines. Coding according to the International Statistical Classification of Diseases and Health-related Problems ICD 043.0, 043.1, 043.2, 044.0, 044.1. Age group: adults/children; Russian Society of Obstetricians and Gynecologists; Association of Anesthesiologists of intensive care – Moscow: Without publishing house. 53 p. Text: direct.
- Клинические протоколы ведения пациентов по специальности «Акушерство и гинекология». Руководство для врачей /под ред. И.Е. Зазерской. В 2 ч. Ч. I. 3‑е изд. Санкт-Петербург: Эко-Вектор, 2023. EDN: YFLBCL
- Семенова Е.С., Мащенко И.А., Труфанов Г.Е., и др. Магнитно-резонансная томография при беременности: актуальные вопросы безопасности// REJR 2020; 10(1):216-230. https://doi.org/10.21569/2222-7415-2020-10-1-216-230.
- Роль периферических и эндометриальных NK-клеток при повторных репродуктивных потерях n.d. https://aig-journal.ru/articles/Rol-perifericheskih-i-endometrialnyh-NK-kletok-pri-povtornyh-reproduktivnyh-poteryah.html (accessed May 20, 2024).
- Bulmer JN, Lash GE. Uterine natural killer cells: Time for a re-appraisal? F1000Research 2019;8:F1000 Faculty Rev-999. https://doi.org/10.12688/f1000research.19132.1.
- Vacca P, Chiossone L, Mingari MC, Moretta L. Heterogeneity of NK Cells and Other Innate Lymphoid Cells in Human and Murine Decidua. Front Immunol 2019;10. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.00170.
- Fu B, Wei H. Natural killer cells in reproduction: Before, during and after pregnancy. Reprod. Immunol., Elsevier; 2021, p. 55–72. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-818508-7.00009-9.
- Continuous human uterine NK cell differentiation in response to endometrial regeneration and pregnancy | Science Immunology n.d. https://www.science.org/doi/10.1126/sciimmunol.abb7800 (accessed June 4, 2024).
- NK-клетки в диагностике репродуктивных нарушений: долгий путь от теории к практике / В. А. Михайлова, А. А. Давыдова, В. А. Загайнова [и др.] // Тезисы III Общероссийской научно-практической конференции для акушеров-гинекологов «Оттовские чтения», Санкт-Петербург, 12–13 ноября 2021 года. – Москва: Издательство журнала StatusPraesens, 2021. – С. 18-19. – EDN GLQIFO.
- Toth B, Zhu L, Karakizlis H, Weimer R, Morath C, Opelz G, et al. NK cell subsets in idiopathic recurrent miscarriage and renal transplant patients. J Reprod Immunol 2020;138:103098. https://doi.org/10.1016/j.jri.2020.103098.
- Баженов, Д. О. лияние клеток трофобласта на цитотоксический потенциал NK-клеток / Д. О. Баженов, В. А. Михайлова // Актуальные проблемы биомедицины - 2021 : материалы XXVII Всероссийской конференции молодых учёных с международным участием, Санкт-Петербург, 25–26 марта 2021 года. – Санкт-Петербург: Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. академика И.П. Павлова, 2021. – С. 144-145. – EDN ZXLEQK.
- Frontiers | Heterogeneity of NK Cells and Other Innate Lymphoid Cells in Human and Murine Decidua n.d. https://www.frontiersin.org/journals/immunology/articles/10.3389/fimmu.2019.00170/full (accessed June 4, 2024).
- Laban M, Ibrahim EA-S, Elsafty MSE, Hassanin AS. Placenta accreta is associated with decreased decidual natural killer (dNK) cells population: a comparative pilot study. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2014;181:284–8. https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2014.08.015.
- Skret-Magierlo J, Wicherek L, Basta P, Galazka K, Sikora J, Wilk M, et al. RCAS1 decidual immunoreactivity during cesarean section in scar deciduosis: immune cell presence and activity. Gynecol Obstet Invest 2008;65:187–94. https://doi.org/10.1159/000111533.
- Smith AL, Bole Aldo P, Racicot KE. Chapter 17 - Placental regulation of immune functions. In: Mor G, editor. Reprod. Immunol., Academic Press; 2021, p. 335–48. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-818508-7.00004-X.
- Liu X, Wang Y, Wu Y, Zeng J, Yuan X, Tong C, et al. What we know about placenta accreta spectrum (PAS). Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2021;259:81–9. https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2021.02.001.
- Прогностическая значимость sFlt-1 и PlGF в диагностике глубокой инвазии плаценты / А. О. Годзоева, И. Е. Зазерская, Е. Ю. Васильева [и др.]. – DOI 10.17816/JOWD88697. – Текст: непосредственный // Журнал акушерства и женских болезней. – 2022. – Т. 71. – No 2. – С. 39-48.
- Jauniaux E, Jurkovic D, Hussein AM, Burton GJ. New insights into the etiopathology of placenta accreta spectrum. Am J Obstet Gynecol 2022;227:384–91. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2022.02.038.
- Zhou J, Chen H, Xu X, Liu Y, Chen S, Yang S, et al. Uterine damage induces placenta accreta and immune imbalance at the maternal-fetal interface in the mouse. Placenta 2022;119:8–16. https://doi.org/10.1016/j.placenta.2022.01.002.
- Harris LK, Benagiano M, D’Elios MM, Brosens I, Benagiano G. Placental bed research: II. Functional and immunological investigations of the placental bed. Am J Obstet Gynecol 2019;221:457–69. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2019.07.010.
Поступила 17.01.2024
Принята в печать 17.01.2025
Об авторах / Для корреспонденции
Поникарова Наталия Юрьевна, аспирант кафедры акушерства и гинекологии с клиникой, Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава России, 197341, Россия, Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2б, +7(981)963-86-35, natalyponi@gmail.com, https://orcid.org/0000-0002-7230-3057
Давыдова Алина Алексеевна, м.н.с. лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий, Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3, +7(812)328-98-50, alyadavydova@gmail.com, https://orcid.org/0000-0001-5313-2910
Шелепова Екатерина Сергеевна, к.м.н., ассистент кафедры акушерства и гинекологии с клиникой, Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава России, 197341, Россия, Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2б, shelepova_es@almazovcentre.ru, https://orcid.org/0000-0002-3233-8239
Осипова Наталья Анатольевна, д.м.н., профессор кафедры акушерства и гинекологии с клиникой, заведующая акушерским отделением патологии беременности, Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава России, 197341, Россия, Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2б, osipova@almazovcentre.ru
Соколов Дмитрий Игоревич, д.б.н., в.н.с. лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий, Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3, falcojugger@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0002-5749-2531
Михайлова Валентина Анатольевна, д.б.н., с.н.с. лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий, Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3, mva_spb@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-1328-8157
Оганян Карина Амбарцумовна, клинический ординатор кафедры акушерства и гинекологии с клиникой, Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава России, 197341, Россия, Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2б, oganyan_karina@bk.ru, https://orcid.org/0000-0002-2743-0882
Сельков Сергей Алексеевич, заслуженный деятель науки РФ, профессор, руководитель отдела иммунологии и межклеточных взаимодействий, Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3, selkovsa@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-1560-7529
Зазерская Ирина Евгеньевна, д.м.н., профессор, заведующая кафедрой акушерства и гинекологии с клиникой, Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава России, 197341, Россия, Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2б, zazera@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-4431-3917
Автор, ответственный за переписку: Наталия Юрьевна Поникарова, natalyponi@gmail.com