«Акушерство и Гинекология» ISSN 2412-5679

NK-клетки периферической крови у пациенток с рубцом на матке и плацентарной адгезивно-инвазивной патологией

Н.Ю. Поникарова, А.А. Давыдова, Е.С. Шелепова, Н.А. Осипова, Д.И. Соколов, В.А. Михайлова, К.А. Оганян, С.А. Сельков, И.Е. Зазерская

Цель: Оценить цитотоксическую активность NK-клеток периферической крови беременных в отношении клеток трофобласта при наличии рубца на матке и плацентарной адгезивной инвазивной патологии (ПАИП) и без нее.

Материалы и методы: В исследование включено 18 беременных женщин, которые составили 3 группы: с рубцом на матке после кесарева сечения и ПАИП (n=6, основная группа), с рубцом на матке без признаков приращения плаценты (n=6, группа сравнения), и 6 беременных женщин без рубца на матке (n=6, группа контроля). Включение женщин в исследование осуществлялось в сроки 2832 недели беременности. У всех исследуемых проведена оценка цитотоксичекой активности NK-клеток периферической крови в отношении клеток трофобласта (JEG-3).

Результаты: Цитотоксическая активность pNK-клеток в группе с ПАИП не имела различий по сравнению с группами сравнения и контроля. Однако цитотоксическая активность pNK ниже в группе беременных женщин, перенесших кесарево сечение в анамнезе, по сравнению с физиологической беременностью (p=0,022).

Заключение: Данные настоящего исследования позволяют предположить, что сниженная цитотоксическая активность pNK-клеток у женщин с рубцом на матке без ПАИП обусловлена наличием механизма, препятствующего развитию приращения плаценты у ряда пациенток из группы риска.

Ключевые слова: естественные клетки киллеры, NK-клетки, цитотоксическая активность, инвазия, вневорсинчатый трофобласт (ВВТ), приращение плаценты.

Вклад авторов: Все авторы внесли существенный вклад в разработку концепции, проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией: Поникарова Н.Ю. – сбор и обработка материалов исследования, написание текста статьи; Давыдова А.А. – работа с клеточной культурой и обработка биоматериала; Шелепова Е.С., Осипова Н.А. – сбор и обработка материалов исследования; Соколов Д.И., Михайлова В.А., Сельков С.А. – редактирование, внесение окончательной правки; Оганян К.А. – обзор литературы, подготовка работы к публикации; Зазерская И.Е. – концепция и дизайн исследования, редактирование теста статьи.

Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Финансирование: Исследование проведено при поддержке ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Министерства здравоохранения Российской Федерации. Государственное задание 123 021 000 051-2 «Разработка шкалы по оценке риска патологической инвазии плаценты у беременных с рубцом на матке».

Одобрение Этического комитета: Протокол исследования был одобрен локальным этическим комитетом ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова» Министерства здравоохранения Российской Федерации (№2211-22 из протокола заседания No 11-22 от 28 ноября 2022 г.).

Согласие пациентов на публикацию: Пациенты подписали информированное согласие на публикацию своих данных.

Обмен исследовательскими данными: Данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны по запросу у автора, ответственного за переписку, после одобрения ведущим исследователем.

Для цитирования: Поникарова Н.Ю., Давыдова А.А., Шелепова Е.С., Осипова Н.А., Соколов Д.И., Михайлова В.А., Оганян К.А., Сельков С.А., Зазерская И.Е. NK-клетки периферической крови у пациенток с рубцом на матке и плацентарной адгезивно-инвазивной патологией.

Акушерство и гинекология. 2025; 2:

На сегодняшний день патогенетические механизмы развития плацентарной адгезивно-инвазивной патологии (ПАИП) остаются не до конца изученными [1]. Основным предиктором развития ПАИП считается рубец на матке после кесарева сечения в анамнезе, однако не во всех случаях развивается аномальная инвазия плаценты. По мнению ряда авторов,  в основе нарушения ангиогенеза и гиперваскуляризации лежит нарушение иммунологической толерантности на границе мать-плацента-плод [2].

NK-клетки (natural killer cells, естественные клетки киллеры)  являются компонентами врожденной иммунной системы, которые обеспечивают защиту от инфекций и развития опухолей, однако их функции при беременности очень разнообразны [3].

uNK-клетки (uterine natural killer cells, маточные NK-клетки) опосредуют баланс между активацией и угнетением инвазии вневорсинчатого трофобласта (ВВТ), регулируют ремоделирование спиральных артерий путем синтеза многочисленных хемокинов, цитокинов а также благодаря цитотоксической функции [4].  Поскольку uNK-клетки участвуют в ключевых этапах децидуализации, имплантации и плацентации, широкое распространение получили исследования периферических и тканевых NK-клеток при патологии беременности [5]. 

Традиционным является представление о том, что у пациентов с привычным невынашиванием повышено содержание uNK-клеток [6, 7]. Исследования показали, что увеличение uNK-клеток у пациенток с привычным невынашиванием вызывает повышенную васкуляризацию и нарушение ремоделирования спиральных артерий, что приводит к преждевременному усилению плацентарного кровотока и чрезмерному окислительному стрессу и, как следствие, к прерыванию беременности [8]. Другие авторы указывают на повышение активности pNK-клеток (периферических NK-клеток крови) при бесплодии или привычном выкидыше [9].  В то же время,  в литературе встречаются убедительные данные о том, что дефицит NK-клеток или изменение их функции в сторону повышения синтеза фактора некроза опухоли (TNF)α и интерферона (IFN) γ и снижения секреции сосудистого эндотелиального фактора роста (VEGF) и плацентарного фактора роста (PLGF) приводит к нарушению ремоделирования сосудов при преэклампсии [10].

Учитывая имеющиеся данные о повышении сывороточных проангиогенных и снижении антиангиогенных факторов при ПАИП, которые в I триместре беременности синтезируются NK-клетками [8], интерес представляет изучение и оценка функции NK-клеток при аномальной инвазии плаценты. Изменение плотности uNK-клеток в зоне маточно-плацентарного комплекса при ПАИП описано в единичных работах [11–13].

Единое происхождение uNK- и pNK-клеток путем дифференцировки из гемопоэтических клеток in situ, а также сходство их фенотипических характеристик [14] позволяет использовать pNK-клетки для изучения взаимодействия с клетками хориона. Но, конечно, следует учитывать и различия рNK и uNK-клеток, касающиеся мембранных рецепторов CD16 и CD56.

Цель исследования: оценить цитотоксическую активность NK-клеток периферической крови беременных в отношении клеток трофобласта при ПАИП.

Материалы и методы

В контролируемое поперечное исследование с ретроспективным анализом включено 18 женщин в сроках 28–32 недели беременности. Основную группу составили 6 пациенток с рубцом на матке после кесарева сечения и ПАИП. В группы сравнения и контроля включены 6 беременных женщин с рубцом на матке без признаков приращения плаценты и 6 беременных женщин без рубца на матке, соответственно.

Критерии включения в исследование: возраст пациенток на момент включения 25–45 лет, спонтанно наступившая беременность, хорион по передней стенке матки по данным I скрининга, наблюдение в женской консультации с 11 недель беременности, подписание добровольного информированного согласия. Критерии невключения: использование вспомогательных репродуктивных технологий, привычный выкидыш, истмико-цервикальная недостаточность, плацентомегалия, существовавший ранее или развившийся во время беременности сахарный диабет, гипертензивные заболевания, преэклампсия, хроническая сердечная недостаточность, хроническая болезнь почек, антифосфолипидный синдром, обострение хронических и острые воспалительные заболевания.

Критериями включения в основную группу явились ультразвуковые и магнитно-резонансные признаки приращения плаценты: согласно действующим протоколам ведения беременности с аномалиями плацентации [15, 16].

Исследование одобрено этическим комитетом ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.

Ультразвуковое исследование выполнено на аппарате Voluson E10, GE Healthcare. Пациенткам основной группы выполнена магнитно-резонансная томография  на аппарате с индукцией магнитного поля 1,5 Тл (Siemens, Германия) в сроки от 28 до 32 недель беременности в соответствии с рекомендациями, разработанными сотрудниками научно-исследовательской группы лучевых методов исследования в перинатологии и педиатрии ФГБУ НМИЦ им. В.А. Алмазова [17].

Включение пациенток в исследование осуществлялось на базе консультативно-диагностического отделения для женщин Перинатального Центра ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» в сроки 32–38 недель беременности после сбора анамнеза, общего и акушерского осмотра. Взятие венозной крови у пациенток проводилось утром натощак в вакуумную пробирку с гепарином.

Оценка цитотоксичекой активности NK-клеток периферической крови в отношении клеток трофобласта (JEG-3) проведена по методике, разработанной в отделе иммунологии и межклеточных взаимодействий НИИ АГиР им. Д.О. Отта (зав. отделом иммунологии и межклеточных взаимодействий, засл. деятель науки РФ, д.м.н., проф. С.А. Сельков). В качестве мишеней для NK-клеток использовали клетки трофобласта линии JEG-3 (АТСС, Manssas, VA, США), представляющие основные характеристики клеток трофобласта I триместра беременности. Клетки культивировали в среде DMEM (Биолот, Россия) с добавлением 10% инактивированной эмбриональной телячьей сыворотки (ЭТС), 100 ЕД/мл пенициллина, 100 мкг/мл стрептомицина, 2 мML-глутамина, 1% заменимых аминокислот и 1 мМ пирувата натрия (Sigma-Aldrich, США). Мононуклеарные клетки периферической крови пациенток, содержащие NK-клетки, выделяли стандартным методом скоростного центрифугирования на градиенте плотности фиколл-верографина (Histopaque-1077, Sigma, США). Для эксперимента клетки трофобласта дезинтегрировали, обрабатывали сукцинимидиловым эфиром карбоксифлуоресцеина (CFSE) и инкубировали в течение 4 ч во влажной атмосфере при t=37°С при 5% CO2 с мононуклеарными клетками периферической крови в соотношении «эффектор:мишени» 10:1. Часть клеток трофобласта инкубировали в аналогичной культуральной среде без добавления мононуклеарных клеток для определения базовой гибели клеток трофобласта. После инкубации клетки обрабатывали раствором пропидия иодида в концентрации 2 мкг/мл при 4°С в течение 10 минут. Анализ гибели клеток-мишеней проводили с помощью проточного цитофлуориметра FACSCantoll (Becton Dickinson, USA) (PI+) [18]

Статистический анализ

Статистический анализ проведен с помощью программы IBM SPSS Statistics Version 26.0. Количественные переменные проверены на нормальность распределения с помощью критерия Шапиро–Уилка.  Количественные показатели с ненормальным распределением описаны с помощью медианы (Me) и межквартильного размаха (Q1–Q3). Сравнение групп выполнено с помощью критерия Краскела–Уоллеса с поправкой на множественные сравнения Бонферони.

Результаты

Беременные женщины исследуемых групп сопоставимы по возрасту, сроку беременности и паритету родов, но различаются по паритету беременностей, количеству внутриматочных вмешательств и операций кесарева сечения в анамнезе (таблица). Беременные основной группы (с рубцом на матке и ПАИП) имели в анамнезе большее количество беременностей (p=0,002), выскабливаний полости матки по поводу искусственного прерывания беременности (p=0,023) и операций кесарева сечения (p=0,02), чем женщины с нормальной беременностью, но не имели различий с группой сравнения. Угрожающий выкидыш в I триместре чаще встречался в основной группе, чем в группах сравнения и контроля (p=0,027).

Таблица. Клиническая характеристика беременных в исследуемых группах

Показатель

Исследуемая группа

 

p

 

Основная группа (n=6)

Группа сравнения (n=6)

Группа контроля (n=6)

Me

Q1Q3

Me

Q1Q3

Me

Q1Q3

Возраст беременной

39,5

38–42

32

28–35

32

30–33

 

0,125

Срок родов

37,5

37–38

38

37–38

38

38–38

0,675

Паритет беременностей

4,5

4–6

2,5

2–3

1,5

1–2

0,003*

p3-1=0,002

p3-2=0,53

p2-1=0,132

 

 

Паритет родов

3,5

2–4

3

2–4

1,5

1–2

0,076

Выскабливание полости матки  в анамнезе

2

1–3

1

0–2

0

0–0

0,027*

p3-1=0,023

p3-2=0,299

p2-1=0,926

Кесарево сечение в анамнезе

1,5

1–2

1

1–1

0

0–0

0,022*

p3-1=0,02

p3-2=0,18

p2-1=1,0

Угроза прерывания беременности

3,5

2–4

1

0–1

0,5

0–1

0, 012*

p2-1=0,032

p3-1=0,027

p3-2=1,0

Примечание. *Статистическая значимость p<0,05 (критерий Краскела–Уоллеса); 3-1/2-1/3-2 – попарные сравнения, где 1 – основная группа, 2 – группа сравнения, 3 – группа контроля.

При сопоставлении цитотоксической активности pNK-клеток в отношении клеток трофобласта в исследуемых группах выявлено, что цитотоксическая активность NK-клеток выше в группе здоровых беременных с интактным миометрием, чем у женщин с рубцом на матке (p=0,022). Однако по результатам настоящего исследования не получено данных о различиях цитотоксической активности в сравнении с основной группой (рисунок).

snimok_ekrana_2025-01-22_104528.png (35 KB)

Рисунок. Цитотоксическая активность NK-клеток в исследуемых группах.

Обсуждение

Вопросы этиологии и патогенеза ПАИП на сегодняшний день остаются спорными. Участие uNK-клеток в процессе ремоделировании спиральных, радиальных артерий и инвазии клеток трофобласта [12, 19], позволяет заподозрить их дисфункцию при ПАИП.

По данным литературы выделяется две главные субпопуляции NK-клеток при беременности: в периферической крови беременных женщин 90% NK-клеток (pNK) в меньшей степени экспрессируют CD56 (CD56dim) и в большей степени – CD16 (CD16+bright). CD 16+ обладают сильной цитотоксической активностью в отношении опухолевых и вирус-инфицированных клеток. Преимущественная экспрессия CD56 (CD56bright) характерна для uNK-клеток, или маточных киллеров, которые локализуются в децидуальной ткани и в эндометрии и производят цитокины TNFα и IFNγ  [20]. На границе мать-плацента плод в начале беременности uNK-клетки преобладают среди лимфоцитов, составляют 70% от общего количества лимфоцитов в эндометрии и постепенно снижаются ко II триместру [21]. Недавние исследования показали, что источником uNK-клеток являются предшественники pNK-клеток, что позволяет использовать последние для изучения функции при патологии беременности [22].

В присутствии клеток трофобласта NK-клетки способны изменять экспрессию мембранных рецепторов и, следовательно, свои функции [23]. Так, например, увеличение количества pNK-клеток с фенотипом CD56dim, обладающих более высокой цитотоксической активностью, и снижение числа CD56bright, а также повышение экспрессии активирующих рецепторов NKp46 и NKp30, перфорина и гранзимов pNK-клетками ассоциировано с привычным выкидышем [24].

Прежде всего, функциональные характеристики uNK-клеток зависят от взаимодействий с клетками-мишенями через ингибирующие или активирующие рецепторы [4]. Цитокины на границе мать-плацента-плод могут как усиливать, так и снижать цитотоксический потенциал NK-клеток [25]. С помощью неклассических белков главного комплкса гистосовместимости (MHC), таких как человеческие лейкоцитарные антигены (HLA)-C, HLA-G и HLA-E,  клетки трофобласта взаимодействуют с иммуноглобулиноподобными рецепторами клеток-киллеров (KIR), лейкоцитарными иммуноглобулиноподобными рецепторами (LILR) и рецепторами естественной киллерной группы (NKG2), и изменяют функцию uNK-клеток [26]. Когда клетки ВВТ, которые экспрессируют HLA-C и HLA-E, взаимодействуют с KIR и NKG2-рецепторами на uNK-клетках, они блокируют цитотоксический ответ NK-клеток на инвазивный трофобласт [4]. С другой стороны, клетки ВВТ с экспрессией HLA-C, при взаимодействии с рецепторами активации uNK-клеток (KIR2DS1 или KIR2DS4), индуцируют секрецию гранулоцитарно-макрофагального и колониестимулирующего факторов (GM-CSF), которые способствуют инвазии клеток трофобласта [8].

В литературе встречаются единичные работы с количественной оценкой содержания NK-клеток в крови беременных с ПАИП [12], а исследований, описывающих функциональную активность pNK-клеток при приращении плаценты, нами не найдено. Некоторые исследования указывают на слабую экспрессию uNK-клеток в децидуальной оболочке биоптатов плацентарного ложа у женщин с ПАИП по сравнению с беременными без патологии плацентации [13, 27]. Другими авторами показано не только снижение экспрессии uNK-клеток в плацентарном ложе при ПАИП, но и прямая положительная корреляция с факторами риска аномальной инвазии и  антиангиогенными факторами по сравнению с женщинами контрольной группы [12].

В проведенном нами исследовании выявлено, что цитотоксическая активность pNK-клеток в отношении клеток трофобласта линии JEG-3 выше у женщин с физиологической беременностью без рубца на матке, чем у женщин с кесаревым сечением в анамнезе, но различий в сравнении с основной группой не получено. Более низкая цитотоксическая активность NK-клеток у женщин, перенесших кесарево сечение в анамнезе, по сравнению с интактным миометрием, вероятно, ассоциирована с особенностями цитотоксической активности NK-клеток на границе мать-плацента-плод в области рубца на матке без признаков аномальной инвазии трофобласта. В более ранних исследованиях Skret-Magierlo J. et al. показано, что у пациенток при повторном кесаревом сечении с нормальной  плацентацией наблюдается более высокая экспрессия CD56+ клеток в рубцовой ткани, по сравнению с децидуальной оболочкой пациенток, перенесших плановое кесарево сечение впервые, но функциональная активность клеток в данном исследовании не оценена [28].

При взаимодействии HLA-G клеток трофобласта и рецептора KIR2DL4 запускается синтез проангиогенных и провоспалительных факторов. Посредством данного взаимодействия индуцируется продукция NK-клеток, которые обладают низкой цитотоксичностью, но активно продуцируют провоспалительные цитокины, ангиогенные факторы, такие как VEGF и ангиопоэтины [29]. Также в результате данного взаимодействия NK-клетки синтезируют протеолитические факторы, такие как металлопротеиназы, которые стимулируют инвазию трофобласта и трансформацию спиральных артерий [30]. Таким образом, можно предположить, что у пациенток с ПАИП при сопоставимой с группами беременных без приращения плаценты цитотоксической активности NK-клеток изменяется продукция проангиогенных факторов и протеолитических ферментов, которые, по мнению ряда авторов, патогенетически обуславливают приращение плаценты [30, 31].

Результаты настоящего исследования согласуются с данными литературы о том, что увеличение частоты беременностей, выскабливаний полости матки и кесарева сечения в анамнезе ассоциировано с риском приращения плаценты в последующие беременности [32]. По мнению некоторых авторов, снижение dNK-клеток первично обусловлено повреждением миометрия в результате предыдущих операций кесарева сечения [33]. В других исследованиях показано, что при ПАИП периваскулярная инфильтрация иммунных клеток, в том числе uNK-клеток, характерна не только для ремоделированных сосудов в области маточно-плацентарного контакта, но и для сосудов миометрия, не контактирующего с трофобластом, что говорит о паракринных механизмах инвазии трофобласта [11]. Важно отметить, что uNK-клетки обуславливают первоначальные структурные изменения маточно-плацентарных сосудов, которые начинаются до инвазии трофобласта, что может свидетельствовать о дисфункции NK-клеток в патогенезе ПАИП [34].

Заключение

В настоящем исследовании впервые проанализирована цитотоксическая активность pNK-клеток у женщин с наличием рубца на матке и ПАИП в сравнении с беременными с рубцом на матке, но без приращения плаценты и физиологической беременностью без рубца на матке. Более низкая цитотоксическая активность pNK-клеток у женщин с рубцом на матке без признаков аномальной инвазии трофобласта по сравнению с физиологической беременностью  позволяет предположить, что в патогенезе приращения плаценты значимую роль играет дисфункция NK-клеток.

Повреждение матки вследствие предыдущих операций кесарева сечения инициирует морфологические и функциональные изменения в децидуальной оболочке матки. Вероятно, сравнительно низкая цитотоксическая активность pNK-клеток в группе с рубцом на матке без аномальной инвазии плаценты ассоциирована с наличием механизма, препятствующего приращению плаценты в зоне рубца. Таким образом, интерес представляет выявление женщин из групп риска ПАИП с изменением цитотоксической активности NK-клеток для прогнозирования приращения плаценты на более ранних сроках беременности.

Литература

  1. Kobayashi H, Matsubara S, Yoshimoto C, Shigetomi H, Imanaka S. Current understanding of the pathogenesis of placenta accreta spectrum disorder with focus on mitochondrial function. J Obstet Gynaecol Res 2024;50:929–40. https://doi.org/10.1111/jog.15936.
  2. Xu X, Zhou Y, Wei H. Roles of HLA-G in the Maternal-Fetal Immune Microenvironment. Front Immunol 2020;11:592010. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.592010.
  3. Kanter JR, Mani S, Gordon SM, Mainigi M. Uterine natural killer cell biology and role in early pregnancy establishment and outcomes. FS Rev 2021;2:265–86. https://doi.org/10.1016/j.xfnr.2021.06.002.
  4. Gaynor LM, Colucci F. Uterine Natural Killer Cells: Functional Distinctions and Influence on Pregnancy in Humans and Mice. Front Immunol 2017;8:467. https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.00467.
  5. El-Badawy O, Helmy AS, Abbas AM, Zahran AM, Afifi NA, Abdel-Rahim MH. Concordance between peripheral and decidual NK cell subsets and killer immunoglobulin-like receptors in women with recurrent spontaneous miscarriages. J Reprod Immunol 2020;140:103130. https://doi.org/10.1016/j.jri.2020.103130.
  6. Chen X, Zhang T, Liu Y, Cheung WC, Zhao Y, Wang CC, et al. Uterine CD56+ cell density and euploid miscarriage in women with a history of recurrent miscarriage: A clinical descriptive study. Eur J Immunol 2021;51:487–9. https://doi.org/10.1002/eji.202048868.
  7. Cooper S, Laird SM, Mariee N, Li TC, Metwally M. The effect of prednisolone on endometrial uterine NK cell concentrations and pregnancy outcome in women with reproductive failure. A retrospective cohort study. J Reprod Immunol 2019;131:1–6. https://doi.org/10.1016/j.jri.2018.10.001.
  8. Xie M, Li Y, Meng Y-Z, Xu P, Yang Y-G, Dong S, et al. Uterine Natural Killer Cells: A Rising Star in Human Pregnancy Regulation. Front Immunol 2022;13. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.918550.
  9. Expression of natural cytotoxicity receptor NKp46 on peripheral blood natural killer cells in women with a history of recurrent implantation failures - Dons’koi - 2021 - Journal of Obstetrics and Gynaecology Research - Wiley Online Library n.d. https://obgyn.onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/jog.14631 (accessed June 5, 2024).
  10. Deer E, Herrock O, Campbell N, Cornelius D, Fitzgerald S, Amaral LM, et al. The role of immune cells and mediators in preeclampsia. Nat Rev Nephrol 2023;19:257–70. https://doi.org/10.1038/s41581-022-00670-0.
  11. Hecht JL, Karumanchi SA, Shainker SA. Immune cell infiltrate at the utero-placental interface is altered in placenta accreta spectrum disorders. Arch Gynecol Obstet 2020;301:499–507. https://doi.org/10.1007/s00404-020-05453-1.
  12. Cross-Talk between Mucosal-Associated Invariant T, Natural Killer, and Natural Killer T Cell Populations is Implicated in the Pathogenesis of Placenta Accreta Spectrum - PubMed n.d. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36997764/ (accessed June 11, 2024).
  13. AbdelFattah S, Morsy M, Ahmed AM, Abdelsalam H, Hosny G. Microcellular approach for the pathogenesis of placenta accreta spectrum inflammatory versus apoptotic pathways; a thorough look on Treg, dNK and VEGF. Pathol - Res Pract 2024;254:155153. https://doi.org/10.1016/j.prp.2024.155153.
  14. Marron K, Harrity C. Endometrial lymphocyte concentrations in adverse reproductive outcome populations. J Assist Reprod Genet 2019;36:837–46. https://doi.org/10.1007/s10815-019-01427-8.
  15. Pathological attachment of the placenta (placenta previa and accreta): Draft clinical guidelines. Coding according to the International Statistical Classification of Diseases and Health-related Problems ICD 043.0, 043.1, 043.2, 044.0, 044.1. Age group: adults/children; Russian Society of Obstetricians and Gynecologists; Association of Anesthesiologists of intensive care – Moscow: Without publishing house. 53 p. Text: direct.
  16. Клинические протоколы ведения пациентов по специальности «Акушерство и гинекология». Руководство для врачей /под ред. И.Е. Зазерской. В 2 ч. Ч. I. 3‑е изд. Санкт-Петербург: Эко-Вектор, 2023. EDN: YFLBCL
  17. Семенова Е.С., Мащенко И.А., Труфанов Г.Е., и др. Магнитно-резонансная томография при беременности: актуальные вопросы безопасности// REJR 2020; 10(1):216-230. https://doi.org/10.21569/2222-7415-2020-10-1-216-230.
  18. Роль периферических и эндометриальных NK-клеток при повторных репродуктивных потерях n.d. https://aig-journal.ru/articles/Rol-perifericheskih-i-endometrialnyh-NK-kletok-pri-povtornyh-reproduktivnyh-poteryah.html (accessed May 20, 2024).
  19. Bulmer JN, Lash GE. Uterine natural killer cells: Time for a re-appraisal? F1000Research 2019;8:F1000 Faculty Rev-999. https://doi.org/10.12688/f1000research.19132.1.
  20. Vacca P, Chiossone L, Mingari MC, Moretta L. Heterogeneity of NK Cells and Other Innate Lymphoid Cells in Human and Murine Decidua. Front Immunol 2019;10. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.00170.
  21. Fu B, Wei H. Natural killer cells in reproduction: Before, during and after pregnancy. Reprod. Immunol., Elsevier; 2021, p. 55–72. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-818508-7.00009-9.
  22. Continuous human uterine NK cell differentiation in response to endometrial regeneration and pregnancy | Science Immunology n.d. https://www.science.org/doi/10.1126/sciimmunol.abb7800 (accessed June 4, 2024).
  23. NK-клетки в диагностике репродуктивных нарушений: долгий путь от теории к практике / В. А. Михайлова, А. А. Давыдова, В. А. Загайнова [и др.] // Тезисы III Общероссийской научно-практической конференции для акушеров-гинекологов «Оттовские чтения», Санкт-Петербург, 12–13 ноября 2021 года. – Москва: Издательство журнала StatusPraesens, 2021. – С. 18-19. – EDN GLQIFO.
  24. Toth B, Zhu L, Karakizlis H, Weimer R, Morath C, Opelz G, et al. NK cell subsets in idiopathic recurrent miscarriage and renal transplant patients. J Reprod Immunol 2020;138:103098. https://doi.org/10.1016/j.jri.2020.103098.
  25. Баженов, Д. О. лияние клеток трофобласта на цитотоксический потенциал NK-клеток / Д. О. Баженов, В. А. Михайлова // Актуальные проблемы биомедицины - 2021 : материалы XXVII Всероссийской конференции молодых учёных с международным участием, Санкт-Петербург, 25–26 марта 2021 года. – Санкт-Петербург: Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. академика И.П. Павлова, 2021. – С. 144-145. – EDN ZXLEQK.
  26. Frontiers | Heterogeneity of NK Cells and Other Innate Lymphoid Cells in Human and Murine Decidua n.d. https://www.frontiersin.org/journals/immunology/articles/10.3389/fimmu.2019.00170/full (accessed June 4, 2024).
  27. Laban M, Ibrahim EA-S, Elsafty MSE, Hassanin AS. Placenta accreta is associated with decreased decidual natural killer (dNK) cells population: a comparative pilot study. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2014;181:284–8. https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2014.08.015.
  28. Skret-Magierlo J, Wicherek L, Basta P, Galazka K, Sikora J, Wilk M, et al. RCAS1 decidual immunoreactivity during cesarean section in scar deciduosis: immune cell presence and activity. Gynecol Obstet Invest 2008;65:187–94. https://doi.org/10.1159/000111533.
  29. Smith AL, Bole Aldo P, Racicot KE. Chapter 17 - Placental regulation of immune functions. In: Mor G, editor. Reprod. Immunol., Academic Press; 2021, p. 335–48. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-818508-7.00004-X.
  30. Liu X, Wang Y, Wu Y, Zeng J, Yuan X, Tong C, et al. What we know about placenta accreta spectrum (PAS). Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2021;259:81–9. https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2021.02.001.
  31. Прогностическая значимость sFlt-1 и PlGF в диагностике глубокой инвазии плаценты / А. О. Годзоева, И. Е. Зазерская, Е. Ю. Васильева [и др.]. – DOI 10.17816/JOWD88697. – Текст: непосредственный // Журнал акушерства и женских болезней. – 2022. – Т. 71. – No 2. – С. 39-48.
  32. Jauniaux E, Jurkovic D, Hussein AM, Burton GJ. New insights into the etiopathology of placenta accreta spectrum. Am J Obstet Gynecol 2022;227:384–91. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2022.02.038.
  33. Zhou J, Chen H, Xu X, Liu Y, Chen S, Yang S, et al. Uterine damage induces placenta accreta and immune imbalance at the maternal-fetal interface in the mouse. Placenta 2022;119:8–16. https://doi.org/10.1016/j.placenta.2022.01.002.
  34. Harris LK, Benagiano M, D’Elios MM, Brosens I, Benagiano G. Placental bed research: II. Functional and immunological investigations of the placental bed. Am J Obstet Gynecol 2019;221:457–69. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2019.07.010.

 Поступила 17.01.2024

 Принята в печать 17.01.2025

Об авторах / Для корреспонденции

Поникарова Наталия Юрьевна, аспирант кафедры акушерства и гинекологии с клиникой, Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава России, 197341, Россия, Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2б, +7(981)963-86-35, natalyponi@gmail.com, https://orcid.org/0000-0002-7230-3057

Давыдова Алина Алексеевна, м.н.с. лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий, Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3, +7(812)328-98-50, alyadavydova@gmail.com, https://orcid.org/0000-0001-5313-2910

Шелепова Екатерина Сергеевна, к.м.н., ассистент кафедры акушерства и гинекологии с клиникой, Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава России, 197341, Россия, Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2б, shelepova_es@almazovcentre.ru, https://orcid.org/0000-0002-3233-8239

Осипова Наталья Анатольевна, д.м.н., профессор кафедры акушерства и гинекологии с клиникой, заведующая акушерским отделением патологии беременности, Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава России, 197341, Россия, Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2б, osipova@almazovcentre.ru

Соколов Дмитрий Игоревич, д.б.н., в.н.с. лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий, Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3, falcojugger@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0002-5749-2531

Михайлова Валентина Анатольевна, д.б.н., с.н.с. лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий, Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3, mva_spb@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-1328-8157

Оганян Карина Амбарцумовна, клинический ординатор кафедры акушерства и гинекологии с клиникой, Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава России, 197341, Россия, Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2б, oganyan_karina@bk.ru, https://orcid.org/0000-0002-2743-0882

Сельков Сергей Алексеевич, заслуженный деятель науки РФ, профессор, руководитель отдела иммунологии и межклеточных взаимодействий, Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3, selkovsa@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-1560-7529

Зазерская Ирина Евгеньевна, д.м.н., профессор, заведующая кафедрой акушерства и гинекологии с клиникой, Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава России, 197341, Россия, Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2б, zazera@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-4431-3917

Автор, ответственный за переписку: Наталия Юрьевна Поникарова, natalyponi@gmail.com

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.