Клинико-молекулярно-генетические детерминанты формирования гестационного сахарного диабета

DOI: https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.4.18-24

06.05.2019
115

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва

Молекулярные механизмы патогенеза гестационного сахарного диабета (ГСД) остаются недостаточно изученными, что во многом определяется его гетерогенной природой. В статье представлен обзор современных литературных данных по изучению молекулярно-генетических детерминант формирования гестационного сахарного диабета. Описаны предикторы формирования ГСД, их взаимосвязь с акушерскими и неонатальными исходами, а также ассоциации с другими видами диабета и риском их развития.
Заключение: необходимо проведение дальнейших исследований по выявлению практически значимых молекулярно-генетических биомаркеров формирования ГСД.

Гипергликемия во время беременности отмечается в 14% среди европейской популяции женщин, в 16% она связана с различными видами диабета, а в 84% – ассоциирована с гестационным сахарным диабетом (ГСД) [1].

ГСД – это гетерогенная группа заболеваний, впервые выявленных во время беременности и характеризующихся гипергликемией, не соответствующей критериям манифестного сахарного диабета (СД). Данное определение подразумевает наличие различных патологических состояний, в том числе, вероятно, имевших место до наступления беременности, доминирующим клинико-лабораторным проявлением которых является гипергликемия, влияющая не только на течение и исходы беременности, но и на качество последующей жизни женщины и ее ребенка. Именно поэтому ВОЗ и ФИГО выделили гипергликемию во время беременности в категорию особо важных нозологических состояний с длительным «шлейфом» неблагоприятных последствий для женщины, составляющих биологическую основу развития заболеваний у ее ребенка во взрослом возрасте.

В 2013 году ВОЗ рекомендовала гипергликемию, впервые выявленную во время беременности, классифицировать как «сахарный диабет при беременности» или «Гестационный сахарный диабет» [2].

ГСД – классический гетерогенный большой акушерский синдром с вовлечением генетических, эпигенетических и других факторов, что подтверждается вариабельностью частоты этого заболевания (4–20%) в зависимости от расово-этнической принадлежности популяции. Так, при относительно невысокой частоте у европейских женщин она достигает 10% среди азиаток-жительниц Южной Азии и Среднего Востока [3].

Согласно данным Государственного регистра СД, распространенность ГСД в России составляет 8–9%, в то время как, по данным международных исследований около 17% всех беременностей осложняется ГСД, и наблюдается тенденция к росту заболеваемости [4].

В настоящее время ГСД остается одной из самых социально и демографически значимых проблем течения и исходов беременностей. СД, впервые выявленный во время беременности, вызывает серьезные краткосрочные и долгосрочные осложнения у матери, плода или новорожденного [5, 6]. Кроме того, ГСД является фактором риска развития ожирения, СД 2-го типа и сердечно-сосудистых заболеваний у матери и ее потомства в будущем [7].

В соответствии с общепринятыми стандартами, диагноз ГСД, как правило, устанавливается после 24 недель гестации на основании орального глюкозотолерантного теста (ОГТТ) [8]. Но, в то же время, существует мнение, что в ряде случаев ГСД протекает без явных клинических признаков и относительной гипергликемии, что затрудняет его своевременную диагностику.

Учитывая многообразие механизмов развития ГСД, большой интерес представляет изучение полиморфизмов различных групп генов, экспрессия которых способствует трансформации гестационной гипергликемии в другие виды диабета, либо подтверждает наличие предшествующего беременности диабета.

Физиологическая инсулинорезистентность в определенной степени необходима для формирования и нормального функционирования фетоплацентарного кровотока. Но гиперинсулинемия при ГСД, которая развивается, несмотря на гипертрофию и гиперплазию β-клеток островков Лангерганса поджелудочной железы, является следствием генетических полиморфизмов и эпигенетических нарушений. Сходство механизмов развития инсулинорезистентности при СД 2-го типа и ГСД инициировало исследования, направленные на поиск связи между нарушением инсулинпродуцирующей функции β-клеток поджелудочной железы у беременных и изменением продукции гормонов желудочно-кишечного тракта (инкретинов), целью которого явилось изучение механизмов гестационного нарушения гомеостаза глюкозы.

Выделяют следующие основные группы генов-кандидатов, ответственных за развитие ГСД:

Гены, связанные с секрецией инсулина

  1. Ген входящих калиевых каналов, подсемейство J, наименование 11 (KCNJ11). Нарушение структуры данного белка приводит к снижению выброса инсулина при повышении концентрации глюкозы. В одном исследовании показана связь между локусом rs5219 (минорный вариант которого приводит к замене E23K в гене KCNJ11) с биохимическими маркерами гликемического статуса и инсулинорезистентности при ГСД [9]. Нарушение секреции инсулина в ответ на повышение уровня гликемии обусловлено дисфункцией АТФ-зависимых К-каналов вследствие активирующих мутаций в генах KCNJ11 и ABCC8. Функциональные дефекты панкреатических β-клеток возникают в результате активирующих мутаций в гене KCNJ11. Большинство таких пациентов могут быть успешно компенсированы на фоне назначения пероральной сахароснижающей терапии
  2. Т-клеточный транскрипционный фактор 7(TCF7L2), кодирующий ядерный рецептор р-катерина, активатора Wnt – сигнального пути. Этот ген регулирует гомеостаз глюкозы. При скрининговом исследовании различных популяций четырех локусных полиморфизмов (rs7903146, rs4506565, rs7901695, и rs12255372) гена TCF7L2 была выявлена ассоциация аллеля rs7903146 Т гена фактора транскрипции TCF7L2, участвующего в каноническом ...

Список литературы

  1. Hod M., Kapur A., Sacks D.A., Hadar E., Agarwal M., Di Renzo G.C. et al. The International Federation of Gynecology and Obstetrics (FIGO) Initiative on gestational diabetes mellitus: A pragmatic guide for diagnosis, management, and care. Int. J. Gynaecol. Obstet. 2015; 131(Suppl. 3): S173-211.
  2. ВОЗ. Диагностические критерии и классификация гипергликемии, впервые выявленной при беременности. Женева: Всемирная организация здравоохранения; 2013.
  3. Kharroubi A.T., Darwish H.M. Diabetes mellitus: The epidemic of the century. World J. Diabetes. 2015; 6(6): 850-67.
  4. Webber J., Charlton M., Johns N. Diabetes in pregnancy: management of diabetes and its complications from preconception to the postnatal period (NG3). Br. J. Diabetes. 2015; 15(3): 107-11.
  5. Mackeen A.D., Lott M. Gestational diabetes. In: Berghella V., ed. Maternal-fetal evidence based guidelines. 3rd ed. CRC Press; 2017: ch 5.
  6. Ornoy A., Reece E.A., Pavlinkova G., Kappen C., Miller R.K. Effect of maternal diabetes on the embryo, fetus, and children: congenital anomalies, genetic and epigenetic changes and developmental outcomes. Birth Defects Res. C Embryo Today. 2015; 105(1): 53-72.
  7. Бурумкулова Ф.Ф., Петрухин В.А. Гестационный сахарный диабет: вчера, сегодня, завтра. Терапевтический архив. 2014; 86(10): 109-15.
  8. Дедов И.И., Сухих Г.Т., Краснопольский В.И., ред. Гестационный сахарный диабет: диагностика, лечение и послеродовое наблюдение. Клинические рекомендации (протокол). М.; 2014.
  9. Lenin M., Ramasamy R., Kulkarani S., Ghose S., Srinivasan A.R.S. Association of KCNJ11(RS5219) gene polymorphism with biochemical markers of glycemic status and insulin resistance in gestational diabetes mellitus. Meta Gene. 2018; 16: 134-8.
  10. Huopio H., Hakkarainen H., Pääkkönen M., Kuulasmaa T., Heinonen S., Laakso M. Association of risk variants for type 2 diabetes and hyperglycemia with gestational diabetes. Eur. J. Endocrinol. 2013; 169(3): 291-7.
  11. Ding M., Chavarro J., Olsen S., Lin Y., Ley S.H., Bao W. et al. Genetic variants of gestational diabetes mellitus: A study of 112 SNPs among 8722 women in two independent populations. Diabetologia. 2018; 61(8): 1758-68.
  12. Franzago M., Fraticelli F., Marchetti D., Celentano C., Liberati M., Stuppia L., Vitacolonna E. Nutrigenetic variants and cardio-metabolic risk in women with or without gestational diabetes. Diabetes Res. Clin. Pract. 2018; 137: 64-71.
  13. Nobrega M.A. TCF7L2 and Glucose metabolism: time to look beyond the pancreas. Diabetes. 2013; 62(3): 706-8.
  14. Pilgaard K., Jensen C.B., Schou J.H., Lyssenko V., Wegner L., Brøns C. et al. The T allele of rs7903146 TCF7L2 is associated with impaired insulinotropic action of incretin hormones, reduced 24 h profiles of plasma insulin and glucagon, and increased hepatic glucose production in young healthy men. Diabetologia. 2009; 52(7): 1298-307.
  15. Tarnowski M., Wieczorek A., Dziedziejko V., Safranow K., Ustianowski P., Celewicz Z., Pawlik A. IL16 and IL18 gene polymorphisms in women with gestational diabetes. Ginekol. Pol. 2017; 88(5): 249-54.
  16. Guinan K.J. Worldwide distribution of type 2 diabetes-associated TCF7L2 SNPs: evidence for stratification in Europe. Biochem. Genet. 2012; 50(3-4): 159-79.
  17. Ao D., Wang H.J., Wang L.F., Song J.Y., Yang H.X., Wang Y. The rs2237892 polymorphism in KCNQ1 influences gestational diabetes mellitus and glucose levels: A case-control study and meta-analysis. PLoS One. 2015; 10(6): e0128901.
  18. Tian C., Chang H., La X., Li J.A. Wushenziye formula improves skeletal muscle insulin resistance in type 2 diabetes mellitus via PTP1B-IRS1-Akt-GLUT4 signaling pathway. Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2017; 2017: 4393529.
  19. Alharbi K.K., Khan I.A., Abotalib Z., Al-Hakeem M.M. Insulin receptor substrate-1 (IRS-1) Gly927Arg: Correlation with gestational diabetes mellitus in Saudi women. Biomed. Res. Int. 2014; 2014:146695.
  20. Popova P.V., Klyushina A.A., Vasilyeva L.B., Tkachuk A.S., Bolotko Y.A., Gerasimov A.S. et al. Effect of gene-lifestyle interaction on gestational diabetes risk. Oncotarget. 2017; 8(67): 112024-35.
  21. Rosta K., Al-Aissa Z., Hadarits O., Harreiter J., Nádasdi A., Kelemen F. et al. Association study with 77 SNPs confirms the robust role for the rs10830963/G of MTNR1B variant and identifies two novel associations in gestational diabetes mellitus development. PLoS One. 2017; 12(1):e0169781.
  22. Petry C.J., Mooslehner K., Prentice P., Hayes M.G., Nodzenski M., Scholtens D.M. et al. Associations between a fetal imprinted gene allele score and late pregnancy maternal glucose concentrations. Diabetes Metab. 2017; 43(4): 323-31.
  23. White V., Jawerbaum A., Mazzucco M.B., Gauster M., Desoye G., Hiden U. IGF2 stimulates fetal growth in a sex- and organ-dependent manner. Pediatr. Res. 2018; 83(1-1): 183-9.
  24. Su R., Wang C., Feng H., Lin L., Liu X., Wei Y. Alteration in expression and methylation of IGF2/H19 in placenta and umbilical cord blood are associated with macrosomia exposed to intrauterine hyperglycemia. PLoS One. 2016; 11(2): e0148399.
  25. Wang X., Li W., Ma L., Ping F., Liu J., Wu X. et al. Investigation of miRNA-binding site variants and risk of gestational diabetes mellitus in Chinese pregnant women. Acta Diabetol. 2017; 54(3): 309-16.
  26. Sun H., Wang X., Chen J., Gusdon A.M., Song K., Li L., Qu S. Melatonin Treatment improves insulin resistance and pigmentation in obese patients with acanthosis nigricans. Int. J. Endocrinol. 2018; 2018:2304746.
  27. Tarnowski M., Malinowski D., Safranow K., Dziedziejko V., Pawlik A. MTNR1A and MTNR1B gene polymorphisms in women with gestational diabetes. Gynecol. Endocrinol. 2017; 33(5): 395-8.
  28. Huopio H., Cederberg H. Association of risk variants for type 2 diabetes and hyperglycemia with gestational diabetes. Eur. J. Endocrinol. 2013; 169(3): 291-7.
  29. Prokopenko I., Langenberg C., Florez J.C., Saxena R., Soranzo N., Thorleifsson G. et al. Variants in MTNR1B influence fasting glucose levels. Nat. Genet. 2009; 41: 77-81.
  30. Pappa K.I., Gazouli M., Economou K., Daskalakis G., Anastasiou E., Anagnou N.P., Antsaklis A. Gestational diabetes mellitus shares polymorphisms of genes associated with insulin resistance and type 2 diabetes in the Greek population. Gynecol. Endocrinol. 2011; 27(4): 267-72.
  31. Heude B., Pelloux V., Forhan A., Bedel J.F., Lacorte J.M., Clement K., Charles M.A. Association of the Pro12Ala and C1431 T varisnts of PPARgamma and their haplotypes with susceptibility to gestational diabetes. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2011; 96(10): E1656-60.
  32. Mao H., Li Q., Gao S. Meta-analysis of the relationship between common type 2 diabetes risk gene variants with gestational diabetes mellitus. PLoS One. 2012; 7(9): e45882.
  33. Bao W., Baecker A., Song Y., Kiely M., Liu S., Zhang C. Adipokine levels during the first or early second trimester of pregnancy and subsequent risk of gestational diabetes mellitus: A systematic review. Metabolism. 2015; 64(6): 756-64.
  34. Feng Y ., Jiang C.D., Chang A.M., Shi Y., Gao J., Zhu L., Zhang Z . Interactions among insulin resistance, inflammation factors, obesity-related gene polymorphisms, environmental risk factors, and diet in the development of gestational diabetes mellitus. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2019; 32(2): 339-47.
  35. Han Y., Zheng Y.L., Fan Y.P., Liu M.H., Lu X.Y., Tao Q. Association of adiponectin gene polymorphism 45TG with gestational diabetes mellitus diagnosed on the new IADPSG criteria, plasma adiponectin levels and adverse pregnancy outcomes. Clin. Exp. Med. 201; 15(1): 47-53.
  36. Pawlik A., Teler J., Maciejewska A., Sawczuk M., Safranow K., Dziedziejko V. Adiponectin and leptin gene polymorphisms in women with gestational diabetes mellitus. J. Assist. Reprod. Genet. 2017; 34(4): 511-6.
  37. Wang H., Dong S., Xu H., Qian J., Yang J. Genetic variants in FTO associated with metabolic syndrome: A meta- and gene-based analysis. Mol. Biol. Rep. 2012; 39(5): 5691-8.
  38. Merkestein M., Sellayah D. Role of FTO in adipocyte development and function: recent insights. Int. J. Endocrinol. 2015; 2015: 521381.
  39. De Melo S.F., Frigeri H.R., dos Santos-Weiss I.C.R., Réa R.R., de Souza E.M., Alberton D. Polymorphisms in FTO and TCF7L2 genes of Euro-Brazilian women with gestational diabetes. Clin. Biochem. 2015; 48(16-17): 1064-7.
  40. Anghebem-Oliveira M.I., Martins B.R., Alberton D., de Souza Ramos E.A., Picheth G., Rego F.G.M. Type 2 diabetes-associated genetic variants of FTO, LEPR, PPARg, and TCF7l2 in gestational diabetes in a Brazilian population. Arch. Endocrinol. Metab. 2017; 61(3): 238-48.
  41. Saucedo R., Valencia J., Gutierrez C., Basurto L., Hernandez M., Puello E. et al. Gene variants in the FTO gene are associated with adiponectin and TNF-alpha levels in gestational diabetes mellitus. Diabetol. Metab. Syndr. 2017; 9: 32.
  42. Iynedjian P.B. Molecular physiology of mammalian glucokinase. Cell. Mol. Life Sci. 2009; 66(1): 27-42.
  43. Santos I.C., Frigeri H.R., Rea R.R., Almeida A.C., Souza E.M., Pedrosa F.O. et al. The glucokinase gene promoter polymorphism −30G>A (rs1799884) is associated with fasting glucose in healthy pregnant women but not with gestational diabetes. Clin. Chim. Acta. 2010; 411(11-12): 892-3.
  44. Gjesing A.P., Rui G., Lauenborg J., Have C.T., Hollensted M., Andersson E. et al. High prevalence of diabetes-predisposing variants in MODY genes among Danish women with gestational diabetes mellitus. J. Endocr. Soc. 2017; 1(6): 681-90.
  45. Freathy R.M., Hayes M.G., Urbanek M., Lowe L.P., Lee H., Ackerman C. et al. Hyperglycemia and Adverse Pregnancy Outcome (HAPO) study: common genetic variants in GCK and TCF7L2 are associated with fasting and postchallenge glucose levels in pregnancy and with the new consensus definition of gestational diabetes mellitus from the International Association of Diabetes and Pregnancy Study Groups. Diabetes. 2010;59(10): 2682-9.
  46. Han X., Cui H., Chen X., Xie W., Chang Y. Association of the glucokinase gene promoter polymorphism -30G > A (rs1799884) with gestational diabetes mellitus susceptibility: A case-control study and meta-analysis. Arch. Gynecol. Obstet. 2015; 292(2): 291-8.
  47. Stuebe A., Wise A., Nguyen T., Herring A., North K., Siega-Riz A. Maternal genotype and gestational diabetes. Am. J. Perinatol. 2013; 31(1): 69-76.
  48. Anghebem-Oliveira M.I., Webber S., Alberton D., de Souza E.M., Klassen G., Picheth G., Rego F.G.D.M. The GCKR gene polymorphism rs780094 is a risk factor for gestational diabetes in a Brazilian population. J. Clin. Lab. Anal. 2017; 31(2): e22035.
  49. Jamalpour S., Zain S.M., Mosavat M., Mohamed Z., Omar S.Z. A case-control study and meta-analysis confirm glucokinase regulatory gene rs780094 is a risk factor for gestational diabetes mellitus. Gene. 2018; 650: 34-40.
  50. Kleinberger J.W., Maloney K.A., Pollin T.I. The genetic architecture of diabetes in pregnancy: implications for clinical practice. Am. J. Perinatol. 2016; 33(13): 1319-26.
  51. Cieza-Borrella C., Díaz-Soto G., Martínez-Pino I., Puig-Domingo M., González-Sarmiento R. Early-onset type 2 diabetes mellitus is associated to HNF4A T130I polymorphism in families of central Spain. J. Investig. Med. 2014; 62(8): 968-74.
  52. Kwak S.H., Kim S.H., Cho Y.M., Go M.J., Cho Y.S., Choi S.H. et al. A genome-wide association study of gestational diabetes mellitus in Korean women. Diabetes. 2012; 61(2): 531-41.
  53. Ju H., Lin R., Yuan Z., Sun Y., Zeng L., Su Z., Jin L. No association detected between seven common variants in the CDKAL1 gene and gestational glycemic traits. Mol. Cell. Probes. 2017; 34: 64-7.
  54. Sun X.F., Xiao X.H., Zhang Z.X., Liu Y., Xu T., Zhu X.L. et al. Positive association between type 2 diabetes risk alleles near CDKAL1 and reduced birthweight in Chinese Han individuals. Chin. Med. J. 2015; 128(14): 1873-8.
  55. Artunc-Ulkumen B., Ulucay S., Pala H.G., Cam S. Maternal serum ADAMTS-9 levels in gestational diabetes: a pilot study. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2017; 30(12): 1442-5.
  56. Franzago M., Fraticelli F., Marchetti D., Celentano C., Liberati M., Stuppia L., Vitacolonna E. Nutrigenetic variants and cardio-metabolic risk in women with or without gestational diabetes. Diabetes Res. Clin. Pract. 2018; 137: 64-71.
  57. Cheng Y ., Ma Y., Peng T., Wang J., Lin R., Cheng HD. Genotype discrepancy between maternal and fetal Pro12Ala polymorphism of PPARG2 gene and its association with gestational diabetes mellitus. Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi. 2010; 45(3): 170-3.
  58. Tarnowski M., Tkacz M., Dziedziejko V., Safranow K., Pawlik A. COX2 and NOS3 gene polymorphisms in women with gestational diabetes. J. Gene Med. 2017; 19(8): e2959.
  59. Kang J., Lee C.N., Li H.Y., Hsu K.H., Lin S.Y. Genome-wide DNA methylation variation in maternal and cord blood of gestational diabetes population. Diabetes Res. Clin. Pract. 2017; 132: 127-36.
  60. Wu P., Farrell W.E., Haworth K.E., Emes R.D., Kitchen M.O., Glossop J.R. et al. Maternal genome-wide DNA methylation profiling in gestational diabetes shows distinctive disease-associated changes relative to matched healthy pregnancies. Epigenetics. 2018; 13: 122-8.
  61. Lowe W.L., Scholtens D.M., Sandler V., Hayes M.G. Genetics of gestational diabetes mellitus and maternal metabolism. Curr. Diab. Rep. 2016; 16(2): 15.
  62. Lekva T., Roland M.C.P., Michelsen A.E., Friis C.M., Aukrust P., Bollerslev J. et al. Large reduction in adiponectin during pregnancy is associated with large-for-gestational-age newborns. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2017; 102(7): 2552-9.
  63. Beaumont R.N., Warrington N.M., Cavadino A., Tyrrell J., Nodzenski M., Horikoshi M. et al. Genome-wide association study of offspring birth weight in 86 577 women identifies five novel loci and highlights maternal genetic effects that are independent of fetal genetics. Hum. Mol. Genet. 2018;27(4): 742-56.
  64. Iljas J.D., Guanzon D., Elfeky O., Rice G.E., Salomon C. Review: Bio-compartmentalization of microRNAs in exosomes during gestational diabetes mellitus. Placenta. 2017; 54: 76-82.
  65. Li J., Song L., Zhou L., Wu J., Sheng C., Chen H. et al. A microRNA signature in gestational diabetes mellitus associated with risk of macrosomia. Cell. Physiol. Biochem. 2015; 37(1): 243-52.
  66. Tagoma A., Alnek K., Kirss A., Uibo R., Haller-Kikkatalo K. MicroRNA profiling of second trimester maternal plasma shows upregulation of miR-195-5p in patients with gestational diabetes. Gene. 2018; 672: 137-42.
  67. Zhu Y., Tian F., Li H., Zhou Y., Lu J., Ge Q. Profiling maternal plasma microRNA expression in early pregnancy to predict gestational diabetes mellitus. Int. J. Gynaecol. Obstet. 2015; 130(1): 49-53.
  68. Cao Y.L., Jia Y.J., Xing B.H. , Shi D.D., Dong XJ. Plasma microRNA-16-5p, -17-5p and -20a-5p: Novel diagnostic biomarkers for gestational diabetes mellitus. J. Obstet. Gynaecol. Res. 2017; 43(6): 974-91.
  69. Shek N.W., Ngai C.S., Lee C.P., Chan J.Y., Lao T.T. Lifestyle modifications in the development of diabetes mellitus and metabolic syndrome in Chinese women who had gestational diabetes mellitus: a randomized interventional trial. Arch. Gynecol. Obstet. 2014; 289(2): 319-27.

Поступила 14.09.2018

Принята в печать 21.09.2018

Об авторах / Для корреспонденции

Ходжаева Зульфия Сагдуллаевна, д.м.н., заведующая 1-м акушерским отделением патологии беременности, ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-07-88. E-mail: zkhodjaeva@mail.ru
Снеткова Нина Викторовна, аспирант 1-го отделения патологии беременности, ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-06-74. E-mail:n_snetkova@mail.ru
Абрамова Мария Евгеньевна, клинический ординатор, ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-06-74.
Клименченко Наталья Ивановна, старший научный сотрудник 1-го отделения патологии беременности, ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-06-74. E-mail:n_klimenchenko@oparina4.ru
Дегтярева Елена Ивановна, к.м.н., врач научно-поликлинического отделения, ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-06-74. E-mail:e_degtyareva@oparina4.ru
Донников Андрей Евгеньевич, к.м.н., заведующий отделением лабораторно-генетических методов, ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-77-00. E-mail: a_donnikov@oparina4.ru

Для цитирования: Ходжаева З.С., Снеткова Н.В., Клименченко Н.И., Абрамова М. Е., Дегтярева Е.И., Донников А.Е. Клинико-молекулярно-генетические детерминанты формирования гестационного сахарного диабета. 2019; 4: 18-24.
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.4.18-24

Полный текст публикаций доступен только подписчикам

Нет комментариев

Комментариев: 0

Вы не можете оставлять комментарии
Пожалуйста, авторизуйтесь