Колонизация центрального венозного катетера у новорожденных отделения реанимации и интенсивной терапии: факторы риска и клиническая значимость

DOI: https://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.12.114-20

27.12.2016
510

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, Москва; ФГБУ Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины федерального медико-биологического агентства, Москва, Россия

Цель исследования. Определить факторы, влияющие на колонизацию центрального венозного катетера (ЦВК), и особенности клинического статуса новорожденных отделения реанимации и интенсивной терапии, ЦВК которых колонизирован микроорганизмами.
Материал и методы. Новорожденные были разделены на две группы: новорожденные, катетер которых был колонизирован условно-патогенными микроорганизмами, и новорожденные, у которых в катетере после извлечения рост микроорганизмов не был обнаружен. В работе оценивался факт наличия или отсутствия колонизации ЦВК и производилась видовая идентификация микроорганизмов.
Результаты. Проанализированы 165 результатов посевов ЦВК от 112 новорожденных. Исследование показало, что наиболее критичным моментом, увеличивающим риск контаминации ЦВК, является момент его постановки. Эксплуатация же ЦВК в течение недели и более не увеличивает частоту микробной колонизации.
Заключение. Полученные данные позволяют сделать вывод о том, что профилактика катетер-ассоциированных инфекций у новорожденных должна заключаться в подборе адекватного антисептика для обработки операционного поля, достаточной его экспозиции и технике асептической постановки ЦВК медицинским персоналом.

Катетер-ассоциированные инфекции (КАИ) являются частым осложнением при длительной госпитализации в отделениях реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ). Способностью образовывать биопленки на поверхности искусственных имплантов обладают многие условно-патогенные микроорганизмы (УПМ). Однако для колонизации имплантов (катетеры, дренажи, интубационные трубки) различной локализации характерно преимущественное заселение специфичными видами УПМ. По данным литературы известно, что для постоянных мочевых катетеров наиболее характерна колонизация Pseudomonas aeruginosa, для эндотрахеальных трубок – Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumannii, Staphylococcus aureus. Для центральных венозных катетеров (ЦВК) в чаще отмечается колонизация коагулазонегативными стафилококками (CoNS) и дрожжевыми грибами рода Candida [1–3]. Колонизация ЦВК не всегда проявляется клинически, поскольку для манифестации инфекции важно сочетание таких факторов, как вирулентность микроорганизма, степень микробного загрязнения катетера и иммунный статус пациента. В отделениях реанимации новорожденных особую значимость имеют CoNS, являющиеся основными возбудителями позднего неонатального сепсиса у новорожденных, особенно у глубоконедоношенных детей с очень низкой и экстремально низкой массой тела при рождении (ОНМТ и ЭНМТ) [2, 4–6]. CoNS (особенно S. epidermidis) чаще других микроорганизмов обнаруживают в посеве крови новорожденных при манифестации позднего неонатального сепсиса [1]. Причиной того, что микроорганизмы с низким патогенным потенциалом приобрели большое значение в этиологии позднего неонатального сепсиса, считают, с одной стороны, более высокий уровень вирулентности госпитальных клонов CoNS, с другой – дефекты цитокиновых каскадов, опосредованных через Toll-like2 рецепторы (TLR2) и общий сниженный пул гранулоцитарных клеток (нейтрофилов), у недоношенных детей при контакте с CoNS [1, 5, 7]. Первичным источником CoNS-сепсиса может служить как колонизация ЦВК, так и транслокация микроорганизмов со слизистых оболочек в кровь [4, 5]. При этом если транслокация CoNS со слизистых оболочек в кровь возможна только у иммунокомпромитированных пациентов, то катетер-ассоциированная инфекция может манифестировать у детей и с нормальным состоянием иммунитета.

Целью данного исследования было определить частоту колонизации ЦВК у новорожденных и частоту клинических осложнений у этой группы детей.

Материал и методы исследования

Исследование проведено в ОРИТ новорожденных ФГБУ НЦАГиП им. В.И. Кулакова Минздрава России в период с ноября 2014 по август 2016 г. В ходе исследования проанализированы 165 результатов посевов ЦВК от 112 новорожденных, из которых у 34 детей получено несколько ЦВК в разное время; 44 были установлены в пупочную вену, 121 катетер – в периферический венозный доступ на верхних и нижних конечностях. Расчет относительных показателей заболеваемости КАИ проводили в соответствии с Федеральными клиническими рекомендациями «Профилактика катетер-ассоциированных инфекций кровотока и уход за центральным венозным катетером» по показателю плотности инцидентности по формуле [8]:

n = число новых случаев КАИ в исследуемый промежуток времени ×1000 число катетеро-дней всех пациентов с ЦВК в этот же период

Микробиологически подтвержденной катетер-ассоциированной инфекцией считали случаи, когда у новорожденного обнаруживали рост УПМ одного и того же вида в катетере и в гемокультуре, полученной из интактной вены не позднее 48 часов до или после извлечения инфицированного катетера. Общая длительность функционирования исследованных ЦВК составила 1138 катетеро-дней.

Извлечение катетеров у новорожденных для исследования проводили при соблюдении правил асептики и антисептики в реанимационном зале. Дистальный участок катетера отрезали непосредственно возле кювеза стерильными ножницами в две пробирки: с 0,9% NaCl и сахарным бульоном. Посев катетера прокатыванием по чашке Петри в соответствии с рекомендациями не проводили из-за крайне малых размеров катетера, поэтому степень обсемененности ЦВК не оценивали. Оценивали лишь факт наличия или отсутствия колонизации ЦВК. Пробирку с бульоном инкубировали в термостате при температуре 37°С в течение 48 часов. В слу...

Список литературы

1. Otto M. Molecular basis of Staphylococcus epidermidis infections. Semin. Immunopathol. 2012; 34(2): 201-14.

2. Freeman J.J., Gadepalli S.K., Siddiqui S.M., Jarboe M.D., Hirschl R.B. Improving central line infection rates in the neonatal intensive care unit: effect of hospital location, site of insertion, and implementation of catheter associated bloodstream infection protocols. J. Pediatr. Surg. 2015; 50(5): 860-3.

3. Юркин А.К., Щеголев А.В., Суборова Т.Н., Максимов А.Г., Семелев В.Н., Борисенко Н.В. Роль микроорганизмов в колонизации центрального венозного катетера и в развитии бактериемии и сепсиса у больных злокачественными лимфомами. Вестник Российской военно-медицинской академии. 2015; 2(50): 67-71.

4. Boo N.Y., Suhaida A.R., Rohana J. Frequent nasopharyngeal suctioning as a risk factor associated with neonatal coagulase-negative staphylococcal colonisation and sepsis. Singapore Med. J. 2015; 56(3): 164-8.

5. Marchant E.A., Boyce G.K., Sadarangani M., Lavoie P.M. Neonatal sepsis due to coagulase-negative staphylococci. Clin. Dev. Immunol. 2013; 2013: 586076.

6. Любасовская Л.А., Корниенко М.А., Припутневич Т.В., Ильина Е.Н., Щеголев А.И. Микробиологическая и молекулярно-генетическая характеристика коагулазонегативных стафилококков, выделенных у новорожденных отделения реанимации и интенсивной терапии. Антибиотики и химиотерапия. 2013; 58(3-4): 25-32.

7. Жукова А.С., Никитина И.В., Ванько Л.В., Матвеева Н.К., Кречетова Л.В., Ионов О.В., Тимофеева Л.А., Дегтярев Д.Н. Особенности продукции активных форм кислорода фагоцитами переферической крови у недоношенных новорожденных в раннем неонатальном периоде. Неонатология. 2016; 2: 89-96.

8. Профилактика катетер-ассоциированных инфекций кровотока и уход за центральным венозным катетером (ЦВК). Федеральные клинические рекомендации. М.; 2015. 24с.

9. Miragaia M., Thomas J.C., Couto I., Enright M.C., de Lencastre H. Inferring a population structure for Staphylococcus epidermidis from multilocus sequence typing data. J. Bacteriol. 2007; 189(6): 2540-52.

10. Lai N.M., Taylor J.E., Tan K., Choo Y.M., Ahmad Kamar A., Muhamad N.A. Antimicrobial dressings for the prevention of catheter-related infections in newborn infants with central venous catheters. Cochrane Database Syst. Rev. 2016; (3): CD 011082.

11. Рекомендации CDC. 2016. Available at: http://www.cdc.gov/nhsn/PDFs/pscManual/4PSC_CLABScurrent.pdf

12. O'Flaherty N., Crowley B. How to use central venous catheter tip cultures. Arch. Dis. Child. Educ. Pract. Ed. 2015;100(2): 69-74.

Поступила 26.08.2016

Принята в печать 02.09.2016

Об авторах / Для корреспонденции

Любасовская Людмила Анатольевна, к.м.н., зав. отделением клинической фармакологии отдела микробиологии и клинической фармакологии ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (906) 074-42-46. E-mail: labmik@yandex.ru
Припутневич Татьяна Валерьевна, д.м.н., зав. отделом микробиологии и клинической фармакологии ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (910) 414-56-16. E-mail: priput1@gmail.com
Никитина Ирина Владимировна, к.м.н., врач отделения реанимации и интенсивной терапии новорожденных, ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-22-71. E-mail: i_nikitina@oparina4.ru
Корниенко Мария Андреевна, м.н.с. ФГБУ Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины ФМБА. Адрес: 119435, Россия, Москва, Малая Пироговская, д. 1а. Телефон: 8 (903) 778-24-51. E-mail: kornienkomariya@gmail.com.
Родченко Юлия Валериевна, врач-бактериолог лаборатории микробиологии ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (965) 374-63-73. E-mail: y_rodchenko@oparina4.ru
Гордеев Алексей Борисович, к.б.н., научный сотрудник лаборатории микробиологии ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (916) 226-86-67. E-mail: gordeew@vega.protres.ru
Ионов Олег Вадимович, к.м.н., зав. отделением реанимации и интенсивной терапии новорожденных отдела неонатологии и педиатрии, ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-22-77. E-mail: Dr.ionov@hotmail.com
Зубков Виктор Васильевич, д.м.н., зав. отделом неонатологии и педиатрии ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. E-mail: v_zubkov@oparina4.ru
Ильина Елена Николаевна, д.б.н., профессор РАН, зам. директора по научной работе, ФГБУ Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины ФМБА. Адрес: 119435, Россия, Москва, Малая Пироговская, д. 1а. Телефон: 8 (916) 600-57-64. E-mail: ilinaen@gmail.com
Дубоделов Дмитрий Васильевич, к.м.н., с.н.с. лаборатории микробиологии ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (903) 772-47-15. E-mail: d_dubodelov@oparina4.ru
Сафановская Анастасия Александровна, клинический ординатор отделения реанимации и интенсивной терапии новорожденных, ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-22-71. E-mail: safanana@bk.ru
Мелкумян Алина Рантиковна, к.м.н., научный сотрудник лаборатории микробиологии ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (903) 264-12-57. E-mail: alinamelkumyan@yandex.ru

Для цитирования: Любасовская Л.А., Припутневич Т.В., Никитина И.В., Корниенко М.А., Родченко Ю.В., Гордеев А.Б., Ионов О.В., Зубков В.В., Ильина Е.Н., Дубоделов Д.В., Сафановская А.А., Мелкумян А.Р. Колонизация центрального венозного катетера у новорожденных отделения реанимации и интенсивной терапии: факторы риска и клиническая значимость. Акушерство и гинекология. 2016; 12: 114-20.
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.12.114-20

Полный текст публикаций доступен только подписчикам

Нет комментариев

Комментариев: 0

Вы не можете оставлять комментарии
Пожалуйста, авторизуйтесь