Подготовка мужчины к зачатию

26.06.2015
926

Отдел андрологии и репродукции человека (зав. – д.м.н. Е. А. Ефремов) НИИ урологии и интервенционной радиологии им. Н. А. Лопаткина – филиал ФГБУ НМИРЦ Минздрава России, Москва

Этап планирования беременности является очень важным для обеспечения максимально комфортных и оптимальных условий для зачатия, вынашивания и последующего рождения здорового ребенка. В данном обзоре рассмотрены влияние и механизм повреждающего действия внешних факторов, социальных привычек и некоторых заболеваний на качество эякулята, а также пути их преодоления с целью оптимальной подготовки мужчины к зачатию. В ряде исследований показана обратная зависимость между качеством спермы и общими заболеваниями. Среди факторов, которые могут негативно влиять на качество спермы, отмечают агрессивное влияние внешней среды, варикоцеле, системные и эндокринные причины, такие как сахарный диабет, ожирение и метаболический синдром. Оксидативный стресс в микросреде яичек может приводить к угнетению сперматогенеза и повреждению ДНК сперматозоидов, что выражается в снижении их подвижности и аномальной морфологии.

По меньшей мере в 30–40 % случаев причинный фактор мужского бесплодия выявить не удается (идиопатическое бесплодие). У таких пациентов отсутствуют указания на проблемы с фертильностью в анамнезе, изменения при физикальном осмотре и в результатах гормональных исследований. При этом в анализе эякулята выявляется снижение числа сперматозоидов (олигозооспермия), уменьшение их подвижности (астенозооспермия) и большое число сперматозоидов с измененной формой (тератозооспермия). Эти изменения в спермограмме часто наблюдаются одновременно и обозначаются как олигоастенотератозооспермия (ОАТ-синдром). Идиопатическое мужское бесплодие обычно связано с гормональными нарушениями, возникающими вследствие загрязнения окружающей среды, генетическими отклонениями. Особую роль отводят процессам накопления свободных радикалов кислорода [1].

Первая гипотеза о влиянии оксидативного стресса на параметры эякулята была выдвинута в 1943 г. J. MacLeod [2] отметил быструю потерю подвижности сперматозоидов при инкубировании в среде, богатой кислородом. Полагая, что потеря подвижности возникла из-за перепроизводства оксидантов, возникающих от увеличения метаболизма кислорода в сперме, он добавил антиоксидантную каталазу в среду, восстановив подвижность, тем самым подтвердив свою гипотезу. Литература по андрологии изобилует доказательствами повреждения морфологии сперматозоидов и нарушения других их функций в условиях окислительного стресса [2–4].

Окислительный стресс и повреждение ДНК сперматозоидов связывают с увеличением сроков достижения беременности, нарушением эмбрионального развития, увеличением числа выкидышей, наличием хронических болезней у потомства, в том числе детских онкологических заболеваний [3]. Половые хромосомы особенно восприимчивы к делеции генов из-за неспособности гаплоидного генома восстанавливать потерянную генетическую информацию. Повреждение и фрагментация ДНК могут произойти в результате аномальной рекомбинации, дефектной упаковки хроматина, незавершенного апоптоза и окислительного стресса [4]. Роль мужчины в достижении беременности и обеспечении здоровья будущего потомства незаслуженно отставлена на задний план, а подготовка к зачатию при нормальных параметрах эякулята полностью возложена на акушерскую службу. Между тем мужчина — это 50 % успеха беременности, и коррекция факторов, влияющих на генетический материал, который несут сперматозоиды, необходима и крайне важна.

Планирование

Количество незапланированных беременностей в мире достигает 55 на 1000 женщин в возрасте от 15 до 44. В развитых странах до 49 % беременностей не были запланированы, в развивающихся странах этот показатель достигает 36 %. Таким образом, примерно каждая третья беременность в мире является незапланированной [5]. В Российской Федерации, по данным 2004 г., только 58% беременностей были запланированы [6]. Согласно отчету «Репродуктивное здоровье населения России», 37% женщин, которые имели хотя бы одну беременность с января 2006 г. до момента опроса (2011), отметили, что их последняя беременность была незапланированной [7].

При планировании беременности негативное влияние табакокурения, алкоголя, кофеина, плохого питания, хронических заболеваний и прочих факторов, способных нарушить целостность ДНК сперматозоидов, можно свести к минимуму. В тех случаях, когда беременность возможна, несмотря на повреждения ДНК, ее возникновение может приводить к врожденным дефектам и даже детским раковым заболеваниям [3]. Цикл развития сперматозоида составляет 72–76 дней, т.е. сперма может полностью обновиться в течение 3 месяцев и при смягчении воздействия неблагоприятных условий, таким образом заблаговременное планирование беременности открывает множество возможностей для улучшения качества спермы. Улучшение мужского здоровья до зачатия может обеспечить повышение благоприятных исходов беременностей путем повышения мужского биологического и генетического вклада в зачатие и вынашивание потомства.

Возраст. При подготовке к зачатию следует учитывать возраст мужчины. Есть несколько исследований, предполагающих, что увеличение возраста ассоциируется со снижением параметров спермы и увеличением времени достижения беременности [8–13]. В сравнительном исследовании выявлена связь возраста мужчины с ухудшением подвижности сперматозоидов, повышенным индексом фрагментации ДНК, целостности хроматина и наличием генных мутаций у плода [8]. Также наблюдается обратная связь между возрастом и количеством сперматозоидов [9], их подвижностью и объемом эякулята [10].

Среднее время достижения беременности для мужчин до 25 составляет чуть более 4,5 мес, тогда как для 40-летнего мужчины этот срок составляет 24 мес [11]. Дети возрастных отцов (40 лет и старше) более чем в 5 раз чаще имеют расстройства аутистического спектра, чем дети, родившиеся от мужчин в возрасте до 30 лет [12]. Риск неудач при применении вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) выше в 5 раз для мужчин старше 41 года [13].

Стресс. Около 1/3 мужчин в бесплодном браке имеют...

Список литературы

  1. Jungwirth A, Giwercman A, Tournaye H, Diemer T, Kopa Z, Dohle G, Krausz C. Рекомендации Европейской ассоциации урологов (EAU) “Мужское бесплодие”. 2011г. http://uroweb.org/wp-content/uploads/10_MaleInfertility.pdf
  2. MacLeod J. The role of oxygen in the metabolism and motility of human spermatozoa. Am J Physiol. 1943;138:512-518.
  3. Aitken RJ, Krausz C. Oxidative stress, DNA damage and the Y chromosome. Reproduction. 2001;122:497-506.
  4. Aitken RJ, De Iuliis GN, McLachlan RI. Biological and clinical significance of DNA damage in the male germ line. Int J Androl. 2009;32:46-56.
  5. Sedgh G, Singh S, Hussain R. Intended and unintended pregnancies worldwide in 2012 and recent trends. Stud Fam Plann. 2014 Sep;45(3):301–14.
  6. Кулаков В.И., Фролова О.Г. Репродуктивное здоровье в Российской Федерации. Народонаселение. 2004;3:60–66.
  7. Репродуктивное здоровье населения России 2011. Итоговый отчет. А. Авдеев, В. Елизаров, И. Троицкая, и. др. — Фонд ООН в области народонаселения. М., 2013. С. 344.
  8. Wyrobek AJ, Eskenazi B, Young S. Advancing age has differential effect on DNA damage, chromatin integrity, gene mutations, and aneuploidies in sperm. Proc Natl Acad Sci USA. 2006;103:9601–9606.
  9. Paulson RJ, Milligan RC, Sokol RZ. The lack of influence of age on male fertility. Am J Obstet Gynecol. 2001;184:818–822.
  10. Eskenazi B, Wyrobek AJ, Sloter E. The association of age and semen quality in healthy men. Hum Reprod. 2003;18:447–454.
  11. Ford WC, North K, Taylor H. Increasing paternal age is associated with delayed conception in a large population of fertile couples: evidence for declining fecundity in older men. The ALSPAC Study Team (Avon Longitudinal Study of Pregnancy and Childhood). Hum Reprod. 2000;15:1703–1708.
  12. Saha S, Barnett AG, Foldi C, Burne TH, Eyles DW, Buka SL, McGrath JJ. Advanced paternal age is associated with impaired neurocognitive outcomes during infancy and childhood. PLoS Med. 2009;10:6(3):e40.
  13. Mathieu C, Ecochard R, Bied V, Lornage J, Czyba JC. Cumulative conception rate following intrauterine artificial insemination with husband's spermatozoa: influence of husband's age. Hum Reprod. 1995;10(5):1090–97.
  14. Zhou L, Shi X, Wang X, Liu D. Analysis of correlative factors of sterility in males undergoing routine sperm inspection by masturbation. Zhong Nan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2012;37(7):725–9.
  15. Bhongade MB, Prasad S, Jiloha RC, Ray PC, Mohapatra S, Koner BC. Effect of psychological stress on fertility hormones and seminal quality in male partners of infertile couples. Andrologia. 2015;47(3):336–42.
  16. Sahin E, Gümüşlü S. Stress-dependent induction of protein oxidation, lipid peroxidation and anti-oxidants in peripheral tissues of rats: comparison of three stress models (immobilization, cold and immobilization-cold). Clin Exp Pharmacol Physiol. 2007;34(5-6):425–31.
  17. Овчарова Р. В. Родительство как психологический феномен: учебное пособие. М.: изд. МПСИ, 2006.
  18. Hauser R. The environment and male fertility: recent research on emerging chemicals and semen quality. Semin Reprod Med. 2006;24(3):156–67.
  19. Calogero AE, La Vignera S, Condorelli RA, Perdichizzi A, Valenti D, Asero P, Carbone U, Boggia B, De Rosa N, Lombardi G, D'Agata R, Vicari LO, Vicari E, De Rosa M. Environmental car exhaust pollution damages human sperm chromatin and DNA. J Endocrinol Invest. 2011;34(6):e139–43.
  20. Zhai Q, Narbad A, Chen W. Dietary strategies for the treatment of cadmium and lead toxicity. Nutrients. 2015;14:7(1):552–71.
  21. Nazıroğlu M, Yüksel M, Köse SA, Özkaya MO. Recent reports of Wi-Fi and mobile phone-induced radiation on oxidative stress and reproductive signaling pathways in females and males. J Membr Biol. 2013;246(12):869–75.
  22. Mailankot M, Kunnath AP, Jayalekshmi H, Koduru B, Valsalan R. Radio frequency electromagnetic radiation (RF-EMR) from GSM (0.9/1.8GHz) mobile phones induces oxidative stress and reduces sperm motility in rats. Clinics (Sao Paulo). 2009;64(6):561–65.
  23. Guney M, Ozguner F, Oral B, Karahan N, Mungan T. 900 MHz radiofrequency-induced histopathologic changes and oxidative stress in rat endometrium: protection by vitamins E and C. Toxicol Ind Health. 2007;23(7):411–20.
  24. Rago R, Salacone P, Caponecchia L, Sebastianelli A, Marcucci I, Calogero AE, Condorelli R, Vicari E, Morgia G, Favilla V, Cimino S, Arcoria AF, La Vignera S. The semen quality of the mobile phone users. J Endocrinol Invest. 2013;36(11):970–74.
  25. Yousefniapasha Y, Jorsaraei G, Gholinezhadchari M, Mahjoub S, Hajiahmadi M, Farsi M. Nitric oxide levels and total antioxidant capacity in the seminal plasma of infertile smoking men. Cell J. 2015;17(1):129–36.
  26. Garcia PC, Piffer RC, Gerardin DC, Sankako MK, Alves de Lima RO, Pereira OC. Could zinc prevent reproductive alterations caused by cigarette smoke in male rats? Reprod Fertil Dev. 2012;24(4):559–67.
  27. Sofikitis N, Miyagawa I, Dimitriadis D, Zavos P, Sikka S, Hellstrom W. Effects of smoking on testicular function, semen quality and sperm fertilizing capacity. J Urol 1995;154:1030–1034.
  28. Ramlau-Hansen CH, Thulstrup AM, Bonde JP, Olsen J, Bech BH. Semen quality according to prenatal coffee and present caffeine exposure: two decades of follow-up of a pregnancy cohort. Hum Reprod. 2008;23(12):2799–805.
  29. Horak S, Polanska J, Widlak P. Bulky DNA adducts in human sperm: relationship with fertility, semen quality, smoking, and environmental factors. Mutat Res 2003;537:53–65.
  30. Sobreiro BP, Lucon AM, Pasqualotto FF, Hallak J, Athayde KS, Arap S. Semen analysis in fertile patients undergoing vasectomy: reference values and variations according to age, length of sexual abstinence, seasonality, smoking habits and caffeine intake. Sao Paulo Med J 2005;123:161–166.
  31. Svartberg J, Midtby M, Bonaa KH, Sundsfjord J, Joakimsen RM, Jorde R. The associations of age, lifestyle factors and chronic disease with testosterone in men: the Tromso Study. Eur J Endocrinol 2003;149:145–152.
  32. Jurewicz J, Radwan M, Sobala W, Radwan P, Jakubowski L, Hawuła W, Ulańska A, Hanke W. Lifestyle factors and sperm aneuploidy. Reprod Biol. 2014;14(3):190–99.
  33. Jensen TK, Gottschau M, Madsen JO, Andersson AM, Lassen TH, Skakkebæk NE, Swan SH, Priskorn L, Juul A, Jørgensen N. Habitual alcohol consumption associated with reduced semen quality and changes in reproductive hormones; a cross-sectional study among 1221 young Danish men. BMJ Open. 2014;4(9):e005462.
  34. Jensen TK, Swan S, Jørgensen N, Toppari J, Redmon B, Punab M, Drobnis EZ, Haugen TB, Zilaitiene B, Sparks AE, Irvine DS, Wang C, Jouannet P, Brazil C, Paasch U, Salzbrunn A, Skakkebæk NE, Andersson AM. Alcohol and male reproductive health: a cross-sectional study of 8344 healthy men from Europe and the USA. Hum Reprod. 2014;29(8):1801–19.
  35. Ahmad G, Moinard N, Esquerré-Lamare C, Mieusset R, Bujan L. Mild induced testicular and epididymal hyperthermia alters sperm chromatin integrity in men. Fertil Steril. 2012;97(3):546–53.
  36. Rao M, Zhao XL, Yang J, Hu SF, Lei H, Xia W, Zhu CH. Effect of transient scrotal hyperthermia on sperm parameters, seminal plasma biochemical markers, and oxidative stress in men. Asian J Androl. 2015.
  37. Kaur S, Bansal MP. Protective role of dietary-supplemented selenium and vitamin E in heat-induced apoptosis and oxidative stress in mice testes. Andrologia. 2014.
  38. National Collaborating Centre for Women's and Children's Health (UK).Fertility: Assessment and Treatment for People with Fertility Problems. London: Royal College of Obstetricians & Gynaecologists (UK); 2013:P. 74–75
  39. Al-Azemi MK, Omu AE, Fatinikun T, Mannazhath N, Abraham S.Factors contributing to gender differences in serum retinol and alpha-tocopherol in infertile couples. Reprod Biomed Online 2009;19:583–590.
  40. Ramlau-Hansen CH, Thulstrup AM, Nohr EA. Subfecundity in overweight and obese couples. Hum Reprod. 2007;22:1634–1637.
  41. Kapoor D, Clarke S, Channer KS, Jones TH. Erectile dysfunction is associated with low bioactive testosterone levels and visceral adiposity in men with type 2 diabetes. Int J Androl 2007;30:500–507
  42. Bakos HW, Mitchell M, Setchell BP, Lane M. The effect of paternal diet-induced obesity on sperm function and fertilization in a mouse model. Int J Androl 2011;34:402–410.
  43. Sallmen M, Sandler DP, Hoppin JA, Sallmén M, Sandler DP, Hoppin JA, Blair A, Baird DD. Reduced fertility among overweight and obese men. Epidemiology 2006;17:520–523.
  44. Omu AE, Kehinde E, Al-Azemi MK. The effects of diabetes mellitus on the ontogeny of human sperm: the role for antioxidants. Androl Update. 2007;1:157–164.
  45. Agbaje M, Rogers DA, McVicar CM. Insulin dependent diabetes mellitus: implications for male reproductive function. Hum Reprod. 2007;22:1871–1877.
  46. Faloia E, Michetti G, De Robertis M. Inflammation as a link between obesity and metabolic syndrome. J Nutr Metab. 2012;2012:476380.
  47. Kasturi SS, Tannir J, Brannigan RE. The metabolic syndrome and male infertility. J Androl. 2008;29:251–259.
  48. Kirkman-Brown J, Barratt CLR, Publicover SJ. Nifedipine reveals the existence of two discrete components of the progesterone-induced
  49. Muciaccia B, Pensini S, Culasso F, Padula F, Paoli D, Gandini L, Di Veroli C, Bianchini G, Stefanini M, D'Agostino A.Higher clusterin immunolabeling and sperm DNA damage levels in hypertensive men compared with controls. Hum Reprod 2012;27:2267–2276.
  50. Omu AE, Al-Othman S, Mohammad AS. Antibiotics therapy for seminal infection: effect on antioxidant activity and T-helper cytokines. J Reprod Med 1998;43:857–864.
  51. Lorusso F, Palmisano M, Chironna M, Vacca M, Masciandaro P, Bassi E, Selvaggi Luigi L, Depalo R.Impact of chronic viral diseases on semen parameters. Andrologia. 2010;42:121–126.
  52. Garolla A, Pizzol D, Bertoldo A, Menegazzo M, Barzon L, Foresta C. Sperm viral infection and male infertility: focus on HBV, HCV, HIV, HPV, HSV, HCMV, and AAV. J Reprod Immunol. 2013;100(1):20–29.
  53. Steinbrenner H, Al-Quraishy S, Dkhil MA, Wunderlich F, Sies H. Dietary selenium in adjuvant therapy of viral and bacterial infections. Adv Nutr. 2015;6(1):73–82.
  54. Fiorino S, Bacchi-Reggiani L, Sabbatani S, Grizzi F, di Tommaso L, Masetti M, Fornelli A, Bondi A, de Biase D, Visani M, Cuppini A, Jovine E, Pession A. Possible role of tocopherols in the modulation of host microRNA with potential antiviral activity in patients with hepatitis B virus-related persistent infection: a systematic review. Br J Nutr. 2014;112(11):1751–68.
  55. Eisenberg ML, Lipshultz LI. Varicocele-induced infertility: Newer insights into its pathophysiology. Indian J Urol. 2011;27:58–64.
  56. Sheehan MM, Ramasamy R, Lamb DJ. Molecular mechanisms involved in varicocele-associated infertility. J Assist Reprod Genet. 2014;31:521–26.
  57. Y. Sakamoto, T. Ishikawa, Y. Kondo, K. Yamaguchi, M. Fujisawa. “The assessment of oxidative stress in infertile patients with varicocele,” British Journal of Urology International. 2008;101(12):1547–1552.
  58. Smit M, Romijn JC, Wildhagen MF, Veldhoven JL, Weber RF, Dohle GR. Decreased sperm DNA fragmentation after surgical varicocelectomy is associated with increased pregnancy rate. J Urol. 2010;183(1):270–274.
  59. T. Mostafa, T. H. Anis, A. El-Nashar, H. Imam, I. A. Othman. Varicocelectomy reduces reactive oxygen species levels and increases antioxidant activity of seminal plasma from infertile men with varicocele,” International Journal of Andrology. 2001;24(5):261–265.
  60. Cervellione RM, Cervato G, Zampieri N, Corroppolo M, Camoglio F, Cestaro B, Ottolenghi A. Effect of varicocelectomy on the plasma oxidative stress parameters. J Pediatr Surg. 2006 Feb;41(2):403–06.
  61. Mancini A, Milardi D, Conte G, Festa R, De Marinis L, Littarru GP. Seminal antioxidants in humans: preoperative and postoperative evaluation of coenzyme Q10 in varicocele patients. Horm Metab Res. 2005 Jul;37(7):428–32.
  62. Evenson DP, Jost LK, Marshall D, Zinaman MJ, Clegg E, Purvis K, de Angelis P, Claussen OP. Utility of the sperm chromatin structure assay as a diagnostic and prognostic tool in the human fertility clinic. Hum Reprod. 1999 Apr; 14(4):1039–49.
  63. Showell MG, Brown J, Yazdani A, Stankiewicz MT, Hart RJ. Antioxidants for male subfertility. Cochrane Database Syst Rev. 2011;(1):CD007411.
  64. Szostak-Węgierek D. Nutrition and fertility. Med Wieku Rozwoj. 2011;15(4):431–36.
  65. Abd-Allah AR., Helal GK., Al-Yahya AA., Aleisa AM., Al-Rejaie SS., Al-Bakheet SA. Pro-inflammatory and oxidative stress pathways which compromise sperm motility and survival may be altered by L-carnitine. Oxid Med Cell Longev. 2009;2:73–81.
  66. Agarwal A., Nallella KP., Allamaneni SS., & Said TM. Role of antioxidants in treatment of male infertility: An overview of the literature. Reprod. Biomed Online. 2004;8:616–627.
  67. Costa M., Canale D., Filicori M., D’Lddio S., & Lenzi A. L-carnitine in idiopathic asthenozoospermia: A multicenter study. Andrologia. 1994;26:155–159.
  68. DeRouchey JE, Rau DC. Role of amino acid insertions on intermolecular forces between arginine peptide condensed DNA helices: implications for protamine-DNA packaging in sperm. J Biol Chem. 201;286(49):41985–92.
  69. Scibona M, Meschini P, Capparelli S, Pecori C, Rossi P, Menchini Fabris GF.L-arginine and male infertility. Minerva Urol Nefrol. 1994;46:251–3.
  70. Förstermann U, Sessa WC. Nitric oxide synthases: regulation and function. Eur Heart J. 2012;33(7):829-37, 837a-837d.
  71. Safarinejad MR, Safarinejad S, Shafiei N, Safarinejad S. Effects of the reduced form of coenzyme Q10 (ubiquinol) on semen parameters in men with idiopathic infertility: a double-blind, placebo controlled, randomized study. J Urol. 2012;188(2):526–31.
  72. Littarru GP, Tiano L. Bioenergetic and antioxidant properties of coenzyme Q10: recent developments. Mol Biotechnol. 2007;37(1):31–37.
  73. Abad C, Amengual MJ, Gosálvez J, Coward K, Hannaoui N, Benet J, García-Peiró A, Prats J. Effects of oral antioxidant treatment upon the dynamics of human sperm DNA fragmentation and subpopulations of sperm with highly degraded DNA. Andrologia. 2013;45(3):211–16.
  74. Павлов А.Р., Ревина А.А., Дупин А.М., Болдырев А.А., Ярополов А.И. Взаимодействие карнозина с супероксидными радикалами в водных растворах. Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1990;110(10):391–93.
  75. Hipkiss AR: Carnosine and its possible roles in nutrition and health. Adv Food Nutr Res 2009;57:87–154.
  76. Haeri SA, Rajabi H, Fazelipour S, Hosseinimehr SJ. Carnosine mitigates apoptosis and protects testicular seminiferous tubules from gamma-radiation-induced injury in mice. Andrologia. 2014 Nov;46(9):1041–46.
  77. MacPhreson A, Scott R, Yates R. The effect of selenium supplementation in subfertile males. In: Anke M, Meissner D, Mills CF, editors. Proceedings of the Eighth International Symposium on Trace Elements in Man and Animals 1993. Jena (Germany): Verlag Media Turistik; 1993. pp. 566–569.
  78. Klein EA. Selenium: epidemiology and basic science. J Urol. 2004;171(2 Pt 2):S50–S53. discussion S53.
  79. Ceremelli C, Portolani M, Cotombari B, Castelli M, Baggio G, Galatulas I. Activity of glycyrrhizin and its diasterioisomers against two new human herpes virus: HHV-6 and HHV-7. Phyto Res.1996;10:527–528.
  80. Watanabe SI, Chey WY, Lee KY, Chang TM. Shiratori K, Watanabe S, Takeuchi T. Effect of licorice extract (Fm100) on release of secretin and exocrine pancreatic secretion in humans. Pancreas. 1986;1(6):483–87.
  81. Dirican E, Turkez H. In vitro studies on protective effect of Glycyrrhiza glabraroot extracts against cadmium-induced genetic and oxidative damage in human lymphocytes. Cytotechnology. 2014;66(1):9–16.
  82. Prasad AS. Zinc deficiency. British Med J. 2008;326:409–410.
  83. Merker HJ, Günther T. Testis damage induced by zinc deficiency in rat. J Trace Element. 1997;11:19–22.
  84. Miura T, Yamauchi K, Takahashi H, Nagahama Y. Hormonal induction of all stages of spermatogenesis in vitro in the male Japanese eel (Anguilla japonica) Proc Natl Acad Sci USA.1991;88:5774–5778.
  85. Bunk MJ, Dnistrian AM, Schwartz MK, Rivlin RS. Dietary Zn deficiency decreases plasma concentrations of vitamin E. Proc Soc Exp Biol Med. 1989;190:379–384.
  86. Smith JC. The vitamin A-zinc connection: a review. Ann NY Acad Sci. 1980;355:62–75.
  87. Momeni HR, Eskandari N. Effect of vitamin E on sperm parameters and DNA integrity in sodium arsenite-treated rats. Iranian Journal of Reproductive Medicine. 2012;10(3):249–256.
  88. Zu K, Ip C. Synergy between selenium and vitamin E in apoptosis induction is associated with activation of distinctive initiator caspases in human prostate cancer cells. Cancer Res. 2003;63(20):6988–95.
  89. Bieri JG. Effect of excessive vitamins C and E on vitamin A status. Am J Clin Nutr. 1973;26(4):382–83.
  90. Hogarth CA, Griswold MD. The key role of vitamin A in spermatogenesis. J Clin Invest .2010;120:956–962.
  91. Камалов А.А., Абоян И.А., Ситдыкова М.Э.,. Цуканов А.Ю, Теодорович О.В., Медведев В.Л., Комяков Б.К., Журавлев В.Н., Новиков А.И., Еркович А.А., Охоботов Д.А., Карпов В.К., Зубков А.Ю. Применение биологически активного комплекса Андродоз® у пациентов с патоспермией и иммунологическим фактором инфертильности. Результаты мультицентрового клинического исследования. Фарматека. 2014;4(277):32–44.
  92. Дендеберов Е.С., Виноградов И.В. Опыт применения биокомплекса АндроДоз для фертилизации больных с идиопатической патоспермией. Эффективная фармакотерапия. Урология и Нефрология.2014;4(41):24–26.
  93. Жуков О.Б., Уколов В.А., Жуков А.А. Комплексная терапия патоспермии у больных после рентгенэндоваскулярной склеротерапии тестикулярных вен. Андрология и генитальная хирургия. 2012;13(4):70-77.

Об авторах / Для корреспонденции

Автор для связи: Е. В. Касатонова – научный сотрудник отдела; e-mail: kasatonova@yandex.ru

Полный текст публикаций доступен только подписчикам

Нет комментариев

Комментариев: 0

Вы не можете оставлять комментарии
Пожалуйста, авторизуйтесь