Приобретенная устойчивость возбудителей внутрибольничных гнойно-септических инфекций к дезинфицирующим и антисептическим средствам

Цель исследования. Изучение чувствительности разных видов возбудителей внутрибольничных гнойно-септических инфекций (ГСИ) к разным группам дезинфектантов и кожных антисептиков.
Материалы и методы. На тест-поверхностях (стекло, металл, пластик, дерево, клеенка) и в растворе изучена чувствительность к 18 дезинфицирующим средствам 238 штаммов возбудителей ГСИ 13 видов, изолированных от пациентов и из больничной среды двух акушерских, трех реанимационных и одного терапевтического стационара.
Результаты. Определена чувствительность К. pneumoniaе и S. haemolyticus, выделенных в акушерском стационаре, по отношению к 13 кожным антисептикам в эксперименте при гигиенической обработке рук, искусственно контаминированных изучаемыми микроорганизмами. На тест-поверхностях количество штаммов возбудителей внутрибольничных ГСИ, устойчивых к дезинфектантам, составило 1,3 ± 0,7%, не полностью чувствительных – 14,7 ± 2,3%. В растворе доля устойчивых штаммов оказалась равной 2,6 ± 1,8%, штаммов с неполной чувствительностью – 2,6 ± 1,8%. Суммированный показатель устойчивости и неполной чувствительности возбудителей внутрибольничных ГСИ к дезинфектантам на тест-поверхностях и в растворе составил 13,7 ± 1,9 на 100 штаммов.
Заключение. Чаще всего приобретенная устойчивость и неполная чувствительность формируется у P. аeruginosa, K. рneumoniaе, S. epidermidis и S. haemolyticus к препаратам, содержащим четвертично-аммониевые соединения, в тех отделениях лечебно-профилактических организаций, где регистрируются случаи ГСИ. Устойчивость возбудителей ГСИ чаще вырабатывается к кожным антисептикам на водной основе и к спиртосодержащим препаратам с низким (менее 58%) содержанием этилового или изопропилового спирта.

В настоящее время следует считать доказанной возможность формирования устойчивости возбудителей внутрибольничных гнойно-септических инфекций (ГСИ) ко всем группам дезинфицирующих средств (ДС) [1, 2]. В связи с этим в СанПин 2.1.3.2630-10 [3] введено положение о необходимости проведения в лечебно-профилактических организациях (ЛПО) мониторинга устойчивости циркулирующих микроорганизмов к применяемым ДС с последующей их ротацией при необходимости. Вместе с тем до настоящего времени на федеральном уровне методика определения чувствительности микроорганизмов к ДС в России остается не утвержденной. Применение же отдельными лабораториями произвольных методик оценки чувствительности микроорганизмов к ДС не позволяет корректно сопоставлять соответствующие результаты, полученные на разных территориях и в разных ЛПО. Не случайно показатель устойчивости возбудителей ГСИ к ДС, по данным научной литературы, варьирует чрезвычайно широко – о т 0 до 77 %.

Предполагается, что среди возбудителей ГСИ резистентность к ДС чаще вырабатывает синегнойная палочка [4, 5]. Отмечается, что устойчивость условно-патогенных микроорганизмов (УПМ) чаще формируется по отношению к ДС на основе четвертично-аммониевых соединений (ЧАС) [1, 2]. Вместе с тем сравнительные данные оценки резистентности разных видов УПМ к разным группам ДС, как правило, не учитывают эпидемическую ситуацию, на фоне которой были отобраны бактерии.

Приобретенная устойчивость возбудителей ГСИ может формироваться и по отношению к антисептикам (АС). Однако такие сообщения пока единичны [6, 7].

Цель работы – изучение чувствительности разных видов возбудителей внутрибольничных ГСИ к разным группам дезинфектантов и кожных антисептиков.

Материалы и методы

На тест-поверхностях (стекло, металл, пластик, дерево, клеенка), в соответствии с методическими рекомендациями [8, 9], изучена чувствительность к 18 ДС 238 штаммов возбудителей ГСИ 13 видов (Кlebsiella pneumoniaе, Рseudomonasaeruginosa, Escherichiacoli, Еnterobactercloacae, Citrobacterkoseri, Acinetobacterbaumanii, Staphylococcusaureus, S . warneri,, S. еpidermidis, S . cohnii, S. haemolyticus, Stenotrophomonasmaltophilia, Burkholderia cepacia), изолированных от пациентов и из больничной среды двух акушерских, трех реанимационных и одного терапевтического стационара. Использованы ДС на основе ЧАС (ЗД-септ, сепотосан-Т); ЧАС и амина (Амиксан), ЧАС и альдегида (Клиндезин-специаль, МИРОДЕЗ универ, Абсолюцид форте); ЧАС и гуанидина (МИРОДЕЗ пур); ЧАС, амина и гуанидина (Амиксидин, Фрисепт-Гамма); альдегида (КОМБИ-ИНСТРУМЕНТ-N), амина и гуанидина (Дезофран); хлорсодержащие ДС, содержащие дихлорантин или натриевую соль дихлоризоциануровой кислоты (Форэкс-Хлор комплит, Сульфохлорантин-Д, УльтраХлорантин, Хлормисепт-эконом); кислородсодержащие (БэбиДез Ультра, ЭКОБРИЗ окси, препарат Х). Кроме того, в растворе к 12 ДС ( сепотосан-Т, Амиксан, МИРОДЕЗ универ, Абсолюцид форте, Амиксидин, Фрисепт-Гамма, КОМБИ-ИНСТРУМЕНТ-N, Форэкс-Хлор комплит, Сульфохлорантин-Д, УльтраХлорантин, БэбиДез Ультра, ЭКОБРИЗ окси) изучена устойчивость 76 штаммов УПМ 7 видов (К. pneumoniaе, Р. aeruginosa, A. baumanii, S. aureus, S. еpidermidis, S. cohnii, S. haemolyticus). Для оценки качества ДС оценивали эффективность их действия в отношении музейных тест-культур (E. coli № 1257 и S. aureus № 906). Использовали предусмотренные инструкциями антибактериальные концентрации ДС (0,01–1%) и экспозиции обработки (15–60 мин). Для нейтрализации ДС применяли 3% твин-80 с 0,3% лецитином. Опыты ставили в трех повторах при условии получения однотипных результатов, при разнотипных результатах исследования повторяли до 8 раз. Общее количество исследований с учетом повторов составило более 5 000.

Штамм микроорганизмов считали чувствительным к ДС при отсутствии роста микр...

Сергевнин В.И., Клюкина Т.В., Волкова Э.О., Решетникова Н.И., Зуева Н.Г., Авдеева Н.С.