Акушерство и Гинекология №1 / 2016
Рецептивность эндометрия в программе экстракорпорального оплодотворения в зависимости от концентрации прогестерона в день введения триггера овуляции
ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, Москва
Повышение эффективности методов вспомогательных репродуктивных технологий является актуальной задачей современной репродуктивной медицины [1]. Известно, что эффективность программы экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) во многом зависит от функциональной зрелости и готовности эндометрия к имплантации, а также от синхронизации с развитием эмбриона. В работах последних лет обсуждается неблагоприятное воздействие овариальной стимуляции в программе ЭКО на имплантационный потенциал эндометрия, что проявляется преждевременной секреторной трансформацией и дискоординацией созревания эндометрия, нарушением рецептивности в «окно имплантации», и как следствие – к неудачам имплантации даже при переносе эмбрионов высокого качества [2, 3].
В последние годы предметом активного обсуждения исследователей является феномен преждевременной лютеинизации (ПЛ) – повышение концентраций сывороточного прогестерона (Р) в день введения триггера овуляции) и механизмы его влияния на рецептивность эндометрия в циклах овариальной стимуляции. ПЛ потенцирует негативное влияние овариальной стимуляции на эндометрий и усугубляет нарушение его рецептивности [4]. Ряд исследований свидетельствуют об отсутствии имплантации эмбрионов при опережении развития эндометрия более, чем на 3 дня согласно критериям Noyes [5, 6]. Прямые доказательства негативного влияния повышенных концентраций преовуляторного Р на эндометрий были показаны лишь в единичных исследованиях при анализе профиля экспрессии мРНК генов маркеров рецептивности [3, 6, 7], что требует продолжения исследований.
Цель исследования: оценить влияние концентраций сывороточного Р в день введения триггера овуляции на рецептивность эндометрия в программе ЭКО.
Материал и методы исследования
В исследование включены 293 пациентки, обратившиеся для проведения программы ЭКО в 1-ое гинекологическое отделение ФГБУ НЦАГиП им. В.И. Кулакова Минздрава России в период с октября 2011 г. по май 2014 г.
Стимуляцию суперовуляции проводили по стандартному длинному протоколу с использованием препаратов рекомбинантного фолликулостимулирующего гормона и человеческого менопаузального гонадотропина. В день введения овуляторной дозы хорионического гонадотропина человека 10000 МЕ определяли сывороточную концентрацию Р. Для верификации ПЛ использовали пороговый уровень сывороточного Р≥4,77 нмоль/л (1,5 нг/мл; коэффициент пересчета 3,18) [8].
Группу исследования для изучения состояния эндометрия составили 36 женщин, из них 17 пациенток с трубно – перитонеальным и/или мужским (субфертильная сперма) факторами бесплодия, которым был отменен перенос эмбрионов, и 19 доноров ооцитов. Аспирационная пайпель – биопсия эндометрия проводилась из области дна матки с помощью аспирационной кюретки Pipelle de Cornier (Laboratoire C.C.D., Франция) в день трансвагинальной пункции яичников. В зависимости от уровня р в день введения триггера овуляции пациентки были разделены: 1-я группа (n=16) – Р≥4,77 нмоль/л; 2-я группа (n=20) – Р<4,77 нмоль/л.
Проведено морфологическое, иммуногистохимическое (ИГХ) и молекулярно – генетическое исследования эндометрия. Материалы биоптатов фиксировали в 10% нейтральном формалине в течение 24 ч. Образцы были обработаны по общепринятой стандартной методике и заключены в парафин. Срезы толщиной 4 мкм готовили на роторных микротомах и окрашивали гематоксилином и эозином. Исследование гистологических препаратов проводилось в световом микроскопе при увеличении от х50 до х600. Гистологическое датирование эндометрия, оценку процента клеток поверхностного эпителия с наличием зрелых пиноподий осуществляли в световом микроскопе при увеличении х400 в 5 полях зрения. ИГХ реакции проводили на серийных депарафинированных срезах толщиной 3–4 мкм по общепринятым методикам (DAKO protocols).
Определение стероидных рецепторов проводили с использованием мышиных моноклональных антител к эстрогеновым (ЭР)α (клон 1D5 RTU «DAKO», Дания) и прогестероновым рецепторам (ПР)-А (клон 636 RTU«DAKO», Дания). Для выявления экспрессии лейкемия ингибирующего фактора (LIF) использовали первичные антитела к LIF (R@DSystems, USA, clone: 9824, 1:100).
Анализ результатов ИГХ реакций для ЭРα и ПР-А проводили с учетом количества окрашенных клеток и интенсивности окраски в железах и строме эндометрия, используя метод гистологического счета Н-score по формуле: HS=1a±2b±3c, где а – процент слабо окрашенных клеток, b–...