Акушерство и Гинекология №5 / 2017

Сравнительный анализ транскриптов клеток кумулюса при использовании различных триггеров овуляции в программах вспомогательных репродуктивных технологий

27 мая 2017

1ФГБУ НЦАГиП им. В.И. Кулакова Минздрава, Москва, России
2ИПО ГБОУ ВПО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России

Цель исследования. Изучение транскрипционного профиля (транскриптов) клеток кумулюса при использовании агониста гонадотропин рилизинг гормона (а-ГнРГ) или человеческого хорионического гонадотропина (чХГ) в качестве триггера овуляции. Материал и методы. В ходе проведенного исследования были проанализированы 179 образцов кумулюсных клеток от 35 пациенток, проходивших программу ЭКО/ИКСИ. Пациентки были разделены на 2 группы с учетом введенного триггера овуляции: I группа (n=17), где триггером являлся чХГ в дозе 10000 МЕ; II группа (n=18), где триггером являлся а-ГнРГ в дозе 0,2 мг. Был исследован уровень экспрессии мРНК 13 генов в кумулюсных клетках методом полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР) в реальном времени Результаты. Были выявлены различия в экспрессии CALM2 (0,08 против 0,05; P<0.0001), TRPM7 (0,82 против 0,70; P=0.007), ALCAM (0,26 против 0,37; P=.0008) и PFKP (3,46 против 4,70; P=0.0005). Все изменения были менее, чем в 2 раза. Экспрессия мРНК гена TP53I3 была выше в клетках кумулюса ооцитов, которые в дальнейшем сформировали бластоцисту (0,3 против 0,23; P=0,0304).

В настоящее время большинство циклов лечения бесплодия методом экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) проводятся с применением контролируемой стимуляции суперовуляции. Наиболее распространенным в клинической практике протоколом стимуляции яичников является протокол с антагонистами гонадотропин-рилизинг-гормона (ант-ГнРГ). Использование ант-ГнРГ подавляет на определенное время синтез эндогенного лютеинизирующего гормона (ЛГ), что позволяет управлять индуцированным менструальным циклом, предотвращая преждевременную лютеинизацию и делая возможным назначение триггера овуляции для получения зрелых ооцитов.

В естественном цикле пик ЛГ инициирует процесс овуляции и разрыв преовуляторного фолликула. На уровне клеток гранулезы пик ЛГ индуцирует разрыв межклеточных соединений между клетками гранулезы и отделение кумулюс-ооцитного комплекса (КОК), завершение мейотического деления и переход ооцита в фазу зрелости, а также лютеинизацию клеток гранулезы [1].

В течение длительного времени для индукции овуляции в циклах вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) использовали введение человеческого хорионического гонадотропина (чХГ) – препарата, обладающего способностью связываться с рецепторами ЛГ и замещать его функцию. В 1974 году было показано, что ЛГ и чХГ имеют сходную структуру: идентичность α-субъединицы чХГ с α-субъединицей ЛГ, а также схожесть 85% их β-субъединиц позволяет чХГ связываться с ЛГ-рецептором и активировать его. Тем не менее, данные молекулы не являются абсолютными аналогами по строению и функции, так как чХГ имеет несколько большую по размерам молекулу, гораздо сильнее связывается с рецептором ЛГ и имеет более длительный период полувыведения.

Применение в качестве триггера овуляции препарата агониста гонадотропин рилизинг-гормона (а-ГнРГ) основано на способности данной молекулы замещать ГнРГ на его рецепторах, вызывая кратковременный пик эндогенного ЛГ, достаточный для овуляции.

Предполагается, что использование различных триггеров овуляции не оказывает влияние на качество получаемых в цикле ВРТ ооцитов и эмбрионов [2, 3]. В то же время возможное негативное влияние а-ГнРГ на исходы ВРТ реализуется за счет изменений в течении лютеиновой фазы, которые не могут быть компенсированы путем применения заместительной гормональной терапии [4, 5].

Более детальное изучение данной проблемы показало, что применение различных препаратов в качестве триггера овуляции приводит к различиям в эндокринном статусе периовуляторного периода. Анализ использования а-ГнРГ и чХГ для индукции овуляции показал значимые различия уровней стероидных гормонов и гонадотропинов в фолликулярной жидкости [6].

Кроме того, содержание в фолликулярной жидкости некоторых регуляторных факторов и факторов роста также различалось при использовании протоколов с различными триггерами овуляции [7, 8].

Следует учитывать, что содержание различных биологических веществ в фолликулярной жидкости может не полностью отражать биологические процессы, протекающие в КОК. Клетки кумулюса в процессе фолликулогенеза находятся в метаболическом симбиозе с развивающимся ооцитом, что делает их привлекательным субъектом для проведения исследований по сравнению с фолликулярной жидкостью. Так было показано, что профиль экспрессии генов стероидогенеза различается при использовании для индукции овуляции а-ГнРГ и чХГ [9].

Согласно полученным данным ряда исследователей, транскрипционный профиль клеток кумулюса может быть использован для прогнозирования качества эмбрионов и исходов программ ВРТ [10, 11].

Тем не менее, ни в одном из вышеперечисленных исследований не оценивали влияние а-ГнРГ и чХГ в качестве триггера овуляции на профиль экспрессии генов в клетках кумулюса.

Целью данной работы было изучение транскрипционного профиля (транскриптов) клеток кумулюса при использовании а-ГнРГ и чХГ в качестве триггера овуляции, а также возможности использования такого профиля в прогнозировании потенциала развития эмбрионов in vitro в программах ВРТ.

Материал и методы исследования

Данное исследование проводилось в период с 2014 по 2016 гг. на базе кафедры акушерства, гинекологии, перинатологии и репродуктологии ИПО Первого МГМУ им. И.М. Сеченова в условиях 1-го гинекологического отделения ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Исследование было одобрено комиссией по этике биомедицинских исследований при ГБОУ ВПО Первый МГМУ имени И.М. Сеченова Минздрава России.

В исследование были включены 35 пациентов с нормальным ответом яичников. Критериями включения были: возраст пациенток от 22 до 38 лет, регулярный менструальный цикл (25–34 дней), индекс массы тела 18–29 кг/м2, уровень ФСГ≤10 МЕ/л, менее 3 неудачных предыдущих попыток ЭКО. Всем пациентам проводили стимуляцию яичников с рекомбинантным фолликулостимулирующим гормоном (ФСГ) (гонал-ф, Serono Merck, Швейцария; или пурегон, Organon, Нидерланды) и/или очищенным человеческим менопаузальным гонадотроп...

Ипен С.М., Бурменская О.В., Павлович С.В., Левков Л.А., Сыркашева А.Г., Кодылева Т.А., Абубакиров А.Н., Мишиева Н.Г., Трофимов Д.Ю.
Статья платная, чтобы прочесть ее полностью, вам необходимо произвести покупку
Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.